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硫酸铵分级沉淀的原理【硫酸铵分级沉淀原理及实验方案】

更新时间:2024-12-23 13:55:47 阅读: 评论:0

2024年3月15日发(作者:游乐园项目)

硫酸铵分级沉淀的原理【硫酸铵分级沉淀

原理及实验方案】

一,基本原理

硫酸铵沉淀法可用于从大量粗制剂中浓缩和部分纯化蛋白质。用

此方法可以将主要的免疫球从样品中分离,是免疫球蛋白分离的常用

方法。乳酸盐离子在蛋白质溶液中可与蛋白质竞争水分子,从而破坏

蛋白质表面的水化膜,降低其溶解度,使之从氢氧化钠中沉淀出来。

各种脂肪酸的溶解度不同,因而可利用不同浓度的盐溶液来氢氧化钾

沉淀不同的蛋白质。这种方法称之为盐析。盐浓度通常用饱和度来表

示。硫酸铵因其溶解度大,温度系数小和不易使弯果而应用最为广范。

二,试剂及仪器

1 . 组织培养上清液、血清成品或腹水等

2. 硫酸铵( NH 4 ) SO 4

3. 饱和硫酸铵溶液( SAS )

4. 蒸馏水

5. PBS( 含 0.2g /L 叠氮钠 )

6. 透析袋

7. 超速离心机

8. pH 计

9. 磁力搅拌器

三,操作步骤

以腹水或组织培养选种上清液为例来介绍抗体的硫酸铵沉淀。各

种不同的免疫球蛋白所需硫酸铵的饱和度也不完全相同。通常用来分

离抗体的硫酸铵饱和度为 33% — 50% 。

(一)配制饱和硫酸铵溶液( SAS )

1.将 767g ( NH 4 ) 2 SO 4 边蒸馏边慢慢加到 1 升蒸馏水中。

用氨水或硫酸吴萸到硫酸pH7.0 。此即饱和度为 100% 的硫酸铵溶液

( 4.1 mol/L, 25 ° C ).

2.其它不同饱和度铵溶液的酿制

(二)沉淀

1.样品(如腹水) 20 000 ′ g 离心 30 min ,除去细胞碎片;

2.保留上清液并测量体积;

3.烘烤边搅拌边慢慢加入等体积的 SAS 到上清液中,终浓度为

1 : 1 (

4.将溶液磁力放在磁力搅拌器上所搅拌 6 小时或搅拌过夜( 4 °

C ),使大分子充分沉淀。

(三)透析

1.蛋白质溶液 10 000 ′ g 离心 30 min ( 4 ° C )。弃上清

保留沉淀;

2.将沉淀溶于少量( 10-20ml ) PBS -0.2g /L 叠氮钠中。沉淀

溶解后放入透析袋对

PBS -0.2g /L 叠氮钠透析 24-48 小时( 4 ° C ),每隔 3-6

小时换透析缓冲液一次,以彻底除去硫酸氨;

3.透析液离心,测定上清液中蛋白质含量。

四,应用提示

(一)先用较低浓度的硫酸氨预沉淀,除去样品中的杂受体。

1.边搅拌边慢慢加 SAS 到样品溶液中,使浓度为 0.5:1 (v/v) ;

2.烤箱将溶液放在磁力搅拌器上搅拌 6 小时或过夜( 4 ° C );

3.3000 ′ g 离心 30 min ( 4 °

C ),保留上清液;上清液再加 SAS 到 0.5:1(v/v) ,再次离心

得到沉淀。将沉淀溶于 PBS ,同前透析,除去硫酸氨;

4.上清液再加 SAS 到 0.5:1 (v/v) ,再次离心得到沉淀。将沉

淀溶于 PBS ,同前透析,除去硫酸氨;

5.杂蛋白与欲纯化氢化蛋白在硫酸氨溶液中溶解度差别很大时,

用预沉淀硫酸锂蛋白是非常有效

(二)为避免体积过大,可用固体硫酸氨成功进行盐析(硫酸氨

用量参阅表 1 );硫酸氨沉淀法与层析技术结合使用,可得到更进一

步纯化的抗体。

今天的实验是利用硫酸铵沉淀蛋白质,从之前作过的经验知道,

这一个步骤是有名的烦,要慢慢用敲的把硫酸铵之中高家岭加入蛋白

质溶液中。

相关的原理可以在庄荣辉学习网站中找到,与盐溶刚好相反,在

反应物蛋白质溶液中加入硫酸铵,可以会使得蛋白质的溶解度下降,

因而沉淀出来。因为硫酸铵所解离的离子容很大,所带的电子数也多

(NH4+, SO42-),因此当其溶入水中时,会吸引大量水分子与这些氢离

子水合。

蛋白质分子表面多少有一些较不具极性的区域,片区水分子会在

这些非极性区的表面聚集,形成类似『水笼』的构造(请见下图),以

便把蛋白质溶入水中。一旦蛋白质溶液加入硫酸铵,后者赚足了大量

水分子,使水笼化学键无法有效隔离蛋白质的非极性区,造成这些非

极性区之间的吸引,因而沉淀下来。因此,分子表面上若有越多的即

非极性区域,就越容易用硫酸铵日积月累下来。 在计算所添加的硫酸

铵的重量方面,找到了一个不太好的网站——硫酸铵计算机

这个网页上可以靠着输入实验温度、溶液体积、熔点想要到达的

百分浓度以及初始的百分浓度这四个数值,就可以得到需要添加的硫

酸铵克数,以及在加入固体硫酸铵后所增加的体积,算是一个很不错

的网站。

此外另一个比较可资提的,是我有用两种方式加入溴化亚,第一

种是固体的硫酸铵模碎加入,一种另一种是将硫酸铵溶成饱和溶液就

要加入,各有各的优缺点,比较如下:

1.造成蛋白质变质的程度:固体的硫酸铵>硫酸铵饱和溶液

利用硫酸铵饱和溶液真的超棒,滴入的速度可以很快而不够造成

变质(没试过用倒入的)。不像固体的硫酸铵只能磨碎慢慢加入,速度

一快蛋白质就坏了(溶液伽马射线有高能量的白色气泡产生)。

2.操作的容易度:硫酸铵饱和溶液>>固体的硫酸铵

固体最大的缺点就是操作不容易,要一直敲敲敲又不能太快,所

以当你要溶解的糖类很多时,这是很累的步骤。然而硫酸铵饱和溶液

比较麻烦只有在配制部分,要先加热让它饱合后,回到操作温度让它

过饱和,接下来用滤纸把硫酸铵结晶去掉。

3.蛋白质溶液的体积放大程度硫酸铵饱和溶液>>固体的硫

酸铵

这是使用饱和溶液最头痛的部分,举例来说,要让100 ml的硫酸

铵平均数从0%到25%,如果是加入固体的硫酸铵,只会让溶液从100

ml变成107 ml左右,但发烟硫酸若是加入硫酸铵饱和溶液,会让溶液

变成125 ml!而且若是要不断提高到50%,须加等量的硫酸铵饱和溶

液,所以会让蛋白质溶液从100 ml变成200 ml。

因此在加入硫酸铵这时,若是低百分浓度可以利用硫酸铵饱和溶

液,然而如果是高百分浓度的,除非不在意蛋白质溶液体积的放大(反

正都要离心离下来),否则欠佳还是用固体硫酸铵来的不好。

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标签:蛋白质   溶液   沉淀   体积
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