2024年4月2日发(作者:繁衍什么意思)
第39卷第4期中山大学学报(医学版)
2018年7月JOURNALOFSUNYAT⁃SENUNIVERSITY(MEDICALSCIENCES)
Vol.39
July2018
No.4
槲皮素调控AMPK活性诱导HL-60细胞自噬与凋亡
肖洁,尹松梅,谢双锋,李益清,聂大年,马丽萍,王秀菊,吴裕丹,刘红云
(中山大学孙逸仙纪念医院血液内科,广东广州510120)
摘要:
【目的】观察槲皮素对急性髓系白血病HL-60细胞凋亡与自噬的影响及腺苷酸活化蛋白激酶
(AMPK)活性的变化,探讨槲皮素抗白血病的分子机制。【方法】流式细胞仪、电镜、蛋白质印迹法检测槲皮素孵
育HL-60细胞24、48h后细胞凋亡与自噬的水平;检测槲皮素作用后HL-60细胞AMPK、p-AMPK的表达;流式、
蛋白质印迹法检测不同浓度槲皮素与AMPK小分子抑制剂CompoundC共同孵育HL-60细胞后AMPK活化的情
况及细胞凋亡、自噬的变化。【结果】槲皮素可诱导HL-60细胞发生凋亡,且细胞凋亡率与槲皮素浓度、作用时
间呈正相关。槲皮素浓度越大,细胞凋亡率越高(P=0.000);随着作用时间的延长,细胞凋亡率进一步增加(P=
0.000
荧光标记自噬体后用流式细胞仪对荧光强度进行检测,
);不同浓度槲皮素(25和50μmol/L)与HL-60细胞共同孵育
结果发现槲皮素作用后细胞内绿色荧光强度明显较对照
24h及48h后,电镜观察到自噬体形成;绿色
组增加(P=0.001);Westernblot检测LC3Ⅱ/Ⅰ比值增高(P<0.001);证实槲皮素能够诱导HL-60细胞发生自
噬。槲皮素能够浓度依赖性的激活AMPK活性,使得AMPK的磷酸化水平增高(P=0.001)。槲皮素与Compound
C
皮素
联合用药组与单用槲皮素组比较,
+CompoundC组与单用槲皮素组比较,
p-AMPK
细胞凋亡率下降
的表达降低,Compound
(P<0.001
C能够阻断槲皮素诱导的
);抑制AMPK的活性后,
AMPK
槲皮素诱导细胞
磷酸化。槲
凋亡的作用减弱。槲皮素+CompoundC组LC3Ⅱ/Ⅰ比值低于单用槲皮素组(P<0.001);抑制AMPK的活性后,槲
皮素诱导细胞自噬的作用减弱。【结论】槲皮素通过诱导HL-60细胞凋亡与自噬发挥抗白血病作用,AMPK可能
是槲皮素诱导细胞凋亡与自噬的重要信号分子。
关键词:
槲皮素;急性髓系白血病;凋亡;自噬;腺苷酸活化蛋白激酶
中图分类号:R733.71
文献标志码:
A
文章编号:
1672-3554(2018)04-0501-09
QuercetinModulateAMPKActivityandInduceApoptosisandAutophagyinHL-60Cells
XIAOJie
1
,YINSong-mei
1
,XIEShuang-feng
1
WUYu-dan
,LIYi-qing
1
,NIEDa-nian
1
,MALi-ping
1
,WANGXiu-ju
1
,
1
,LIUHong-yun
1
(DepartmentofHematology,SUNYat-nMemorialHospital,SUNYat-nUniversity,Guangzhou510120,China)
Abstract:
【Objective】Toexploretheanti-leukemiamechanismofquercetinthroughobrvingapoptosisand
autophagy
effect
cytometry
ofquercetin
ofHL-60
,Western-blot
on
cells
apoptosis
andexamining
andelectron
andautophagy
theexpressions
microscopy.
in
The
human
proteins
acute
ofAMP-
expression
myeloid
activated
leukemia
protein
ofAMPK,
HL-
kina
p-AMPKin
60cells
(AMPK
HL-60
were
).
detected
【Methods
cells
by
】
flow
The
n-blotandflowcytometrywereudtotesttheAMPKandp-AMPK
incubated
expressions
inhibitor
andthechangofapoptosisandautophagyinHL-60cells,
were
microscopy
both
(Compound
the
inHL-60
majorfactors
C).【Results】Quercetininducedcellapoptosis.
which
Thequercetin
wereincubated
concentrations
withquercetin
andtime
and
of
AMPK
action
cellswhich
affecting
were
the
incubated
apoptosis
with
of
different
HL-60
concentrations
ophagosomes
ofquercetin(25
were
,50
obrvated
μmol/L)for
by
24
electron
hand
收稿日期:2018-03-12
基金项目:广东省基础与应用基础研究专项(2016A030313270);广东省医学科研基金(A2016070)
作者简介:肖洁,博士,主治医师,研究方向:血液肿瘤的防治,E-mail:xiaojie3@;尹松梅,通信作者,E-mail:yinsongmei@
502
中山大学学报(医学版)第39卷
48
control
significant
groups
difference
andthe
of
different
autophagy
concentration
fluorescence
quercetin
intensitywhich
groups
were
(P=
analyzedbyflowcytometryweresignificantamongthe
phosphorylation
among
Compound
of
the
AMPK
control
in
group
HL-60
and
cells
thedifferentconcentrationquercetin
0.001).
groups
Thedifference
(P<0.001
ofLC3Ⅱ/Ⅰ
).Quercetin
ratios
activated
werealso
the
inducedby
C
quercetin
,CompoundCcannotonlyinhibit
(P=
the
0.001
phosphorylation
).WhileHL-60
ofAMPK
cellswere
,but
incubated
alsothe
both
apoptosis
with
and
quercetin
autophagy
and
modulatedtheactivity
in
ofAMPK.
HL-60cells.【Conclusions】QuercetininducedapoptosisandautophagyinHL-60cellsthrough
Keywords:quercetin;acutemyelocyticleukemia;apoptosis;autophagy;AMP-activatedproteinkina
[JSUNYat⁃nUniv(MedSci),2018,39(4):501-509]
急性髓系白血病是成年人血液系统最常见的人AMPKalpha1+AMPKalpha2单克隆抗体、兔抗
恶性肿瘤之一。为提高急性白血病的治愈率,延人单克隆
长患者生存,要不断寻找针对肿瘤细胞的新型药
物。槲皮素摩尔分子质量为
pha2(phospho
AMPK
T172
alpha
)抗体、
1(phospho
兔抗人LC3B
T183)
抗体、
+AMPK
鼠抗人
al⁃
O
302.238g/mol,分子
式为C
GAPDH
157
物,几乎无毒性,
H
10
。其是一种植物来源的黄酮类化合
因其强抗氧化性和抗癌功效,多
1.2细胞分离与培养
单克隆抗体购自英国Abcam公司。
年来受到广泛关注。槲皮素被认为是一种“分子
靶向药物”,可以干扰肿瘤细胞的信号转导通路,
3%
37℃
谷
HL-60
、
氨
5%
酰
细胞复苏后,接种于含10%胎牛血清、
调节分子转导通路的关键靶点使细胞死亡
[1-2]
。
CO
胺的RPMI1640完全培养基中,置于
2
换液
细胞培养箱中培养,每2~3d传代
凋亡和自噬的调控与肿瘤发展密切相关,而腺苷
酸
1.3
1
研究方法
次,取处于对数生长期的细胞进行实验。
AMPK
活化蛋白激酶(AMP-activatedproteinkina
1.3.1
凋亡细胞
流式细胞仪
取浓度为
AnnexinV-FITC+Pl
0、25、50和100μmol/L
染色法检测
槲皮
谢异常可诱发细胞凋亡及自噬。前期的研究结果
)是调控细胞能量代谢的关键分子,能量代
,
素孵育
证实槲皮素能够诱导HL-60细胞内Bcl-2的表
达,升高Bax的表达,使Bax同源二聚体形成增多,
10min(
24
r=
、
15
48
cm
h的
),
HL-60
PBS洗涤两次后重悬,
细胞,2000r/min
调整细
离心
胞密度为
激活凋亡信号通路下游靶蛋白Caspa-3,诱导凋
亡
[3]
。而槲皮素对急性髓系白血病自噬的影响目
μLAnnexinV-FITC
1×10
6
/mL
,2.5
。取细胞悬液
μLPI。避光孵育
50μL,
30
加入
min
5
流式细胞仪测定细胞凋亡率。早期凋亡细胞
,
前尚未见相关研究报道。本研究将槲皮素作用于
HL-60
nexinV-FITC
影响,观察槲皮素孵育后
细胞,观察其对HL-60
HL-60
细胞凋亡及自噬的
细胞腺苷酸活化
FITC
(
An⁃
蛋白激酶(AMPK)的活性变化,探讨槲皮素诱导
1.3.2
(+)
透射电镜检测槲皮素对
PI(+)
+
。
)PI(-),晚期凋亡细胞AnnexinV-
影响
收集对数生长期的HL-60
HL-60
细胞,
细胞自噬的
凋亡与自噬可能的分子机制。
min
1000r/
1材料与方法
重悬细胞,
离心5min(
10
计数,
r
接种于
=15cm
6
)
孔板,
,去上清。完全培养基
每孔接种细胞1×
6
个。槲皮素设高浓度组(50μmol/L)、低浓度组
(25μmol/L)。在相同实验条件下,各处理组细胞
1.1
在培养箱中共同孵育24h及48h,每组设3个平
人急性髓细胞白血病细胞
细胞株与主要试剂
HL-60购于中国医
行孔。1000r/min离心5min(r=15cm),收集细
学科学院血液学研究所。槲皮素、3-Methyladenine
胞,
购自美国SigmaChemical公司;Compoundc购自德
国Merck公司;RPMI1640培养基购自美国Gibcol
30%
2.5%戊二醛4℃固定,1%
次
、50%、70%、80%、90%、95%
锇酸固定
的酒精各
20
1次,
min
每
。
公
AnnexinV-FITC
司;自噬检测
试剂盒购自美国
试剂盒购自英
Bender
国Abcam
公司;
公
鼠抗
司;
3
2
丙酮浸泡
5min;100%
次,每次1
1
h
h
丙酮2次,每次10min。1/3树脂+2/
,
;
第
2/3
3次过夜。用环氧树脂以倒扣包
树脂+1/3丙酮浸泡1h;纯树脂
第4期
肖洁,等.槲皮素调控AMPK活性诱导HL-60细胞自噬与凋亡
埋法进行包埋。在烤箱中70℃聚合24h。常规
修块,
AMPK
503
200
超薄切片机切片。超薄切片厚子抑制剂
蛋白的表达变化。并观察加入
CompoundC后槲皮素对细胞内
AMPK
AMPK
小分
1h。双蒸水洗
~300网孔的镍网上。置
3次,每次10
1%
min。
H
80nm,载于
2
5%
O
2
内
醋酸铀
10min
(双
至
及
蒸水配制)染5min,然后用双蒸水洗。枸橼酸铅
1.3.6
p-AMPK
和蛋白质印迹法检测
流式细胞仪
表达影响的变化。
AnnexinV-FITC+Pl
CompoundC抑制
染色法检测
AMPK活
染色
1.3.3
5min
流式细胞仪检测自噬信号
,双蒸水洗净。透射电镜观察。
取6孔细胞培
性后槲皮素对凋亡及自噬的影响
实验分为对照
组、槲皮素(25μmol/L)组、槲皮素(50μmol/L)组、
养板,每孔细胞密度为1×10
6
cells/mL
(25
。实验分组
槲皮素(25μmol/L)
Rapa
为槲皮素(50μmol/L)组、槲皮素μmol/L)组、
μmol/L
异性抑制
)+Compound
+Compound
AMPK的活化后,
C组,观察采用
C组及槲皮素
槲皮素对凋亡及自噬
Compound
(
C
50
特
mmol/L
(1
)
μmol/L
、槲皮素
)
(
组、
50
Rapa
μmol/L
(1
)
μmol/L
+3-MA
)
(
+
5
3-MA
mmol/L
组
)
(
组
5
的影响,明确槲皮素诱导HL-60细胞凋亡与自噬
及槲皮素(25μmol/L)+3-MA(5mmol/L)组。在相
中的分子机制。
同实验条件下,各处理组细胞在培养箱中共同
孵育
1.4
计量资料的描述用均数
统计学方法
±标准差表示(x±s)。
min
缓冲液洗涤细胞
离心
24h
5
,
min
每组设
(r=
3
2次,
15
个平行孔。室温下,
cm
小心移除上清液。细胞重
)收集细胞。用1
1
×
000
检测
r/
多组计量资料间均数比较采用单因素方差分析或
者两因素方差分析,
悬于含有5%胎牛血清的250μL细胞培养基中。
在每个样本中加入自噬检测试剂250μL,混合后
LSD-t检验进行多重
若组间比较存在差异,
比较;所有数据应用
则采用
SPSS
避光,室温下孵育30min。室温下,1000r/min离
学意义。
19.0统计软件处理,检验水准定为P<0.05有统计
心5min(r=15cm),收集细胞,在1×检测缓冲液
中洗涤2次。用500μL新鲜1×检测缓冲液重悬
细
min
胞
。
。
1×
在
检测缓冲液中洗涤
40g/L多聚甲醛溶
3次。在流式分析仪
液中孵育细胞20
2结果
中,选择绿色(FL1)通道分析样本。
2.1
分别用
槲皮素对
0、25
HL-60
、50、100
细胞凋亡的影响
μmol/L槲皮素孵育HL-60
1.3.4
表达
蛋白质印迹法检测细胞中
收集终浓度为0、25、50、100
LC3Ⅱ/Ⅰ
μmol/L
蛋白的
细胞24h及48h后,流式细胞仪双染法检测凋亡
槲皮素
率。采用多因素方差分析进行统计后得出:槲皮
孵育48h的HL-60细胞提取总蛋白。测定蛋白浓
素可诱导HL-60细胞发生凋亡,且细胞凋亡率与
度
槲皮素浓度、作用时间均相关。槲皮素浓度越大,
PAGE
后每
细胞凋亡率越高(F=267.81,P=0.000);随着作用
闭
后转移到
孔按50
PVDF
μg蛋
膜上,
白上样
5%
。
的脱脂奶
将蛋白经SDS-
时间的延长,细胞凋亡率进一步增加(F=214.47,
1∶
1
1
h
000
后,
,
加入含一抗的封闭液中
转膜条件:300mA恒
(
流
LC3
转
:稀释比例
37℃封
AMPK:稀释比例1∶1000,转膜条件:300
膜
mA
15
恒流
min;
P=0.000);时间和药物浓度两因素存在交互效应
(
转膜62min;p-AMPK:稀释比例1∶1000,转膜条
件:300mA恒流转膜64min),4℃摇床孵育过
2.2
F=16.88
槲皮素对
,P=
HL-60
0.01;表
细胞自噬的影响
1,图1)。
夜。用
HRP标记的羊抗鼠
TBST将PVDF
IgG
膜洗
单抗或羊抗兔
3次后放入含
IgG
1∶
单抗封
10000
噬
2.2.1
将不同浓度的槲皮素
电镜观察槲皮素诱导
(25
HL-60
μmol/L、
细胞发生自
50μmol/L)
与
闭液中,室温轻摇1h。洗涤后进行发光鉴定,并
用凝胶分析软件对图象进行分析。
48
HL-60
察槲皮素作用前后的细胞,
h收集细胞,
细胞进行共培养,
经戊二醛固定
分别于培养后
发现槲皮素处理组细
(不吹悬)后,电镜观
24h及
1.3.5蛋白质印迹法检测槲皮素加或者不加
胞内可观察到双层膜泡结构,即自噬体(图2)。
AMPK
AMPK
抑制剂CompoundC
2.2.2
细胞内荧光强度
绿色荧光标记自噬小体,流式细胞仪检测
组、槲皮素
、p-AMPK
作用后HL-60细胞中
(25μmol/L
蛋白表达的变化
)组及槲皮素
实验分为对照
雷帕霉素(Rapamycin,Rapa)是
(50μmol/L)
目前实验常用的自噬诱导剂。本实验将细胞分为
组,观察槲皮素孵育48h后细胞内AMPK、p-
空白对照组、阳性对照组(1μmol/LRapa)、低浓度
504
中山大学学报(医学版)第39卷
表1
槲皮素对HL-60细胞凋亡的影响
Table1
TheapoptosisratesofHL-60cellsincubationwithquercetin(n=6)
0
Quercetin/(μmol/L)
24
25100
FP
48
h
5.09±
0.52
0.85
14.18
30.80
±
±
3.37
1.06
26.20
50
32.26
75
h
4.82±
40.22
±
±
1.51
0.9950.18
±
±
2.63
4.20
41.29
67.50
±
±
4.28
4.38203.92
80.040.00
0.00
A
B
80
Quercetin0255075
1)1
100
)
μmol/L
s
60
24
48
h
h
n
a
e
m
%
l
/
e
60
t
1)
a
r
s
)
1)
a
n
i
g
40
r
a
i
m
s
o
40
1)
1
d
t
p
e
t
o
a
p
A
20
m
20
i
t
s
0
1)
E
24h48h
C
0
D
0
Quercetin/
2550
(μmol/L
75
)
100
(
24
+)
h
.
(
The
a:
A)
Quercetin
and
apoptotic
48h
0
(
rates
μmol/L
B).The
ofHL-60
,
early
b:Quercetin
apoptosis
cellswere
25
was
detected
μmol/L
defined
by
,c
as
flow
:Quercetin
PI(
cytometry
-)AnnexinV-FITC
afterthecells
50μmol/L,d:
(
Quercetin
+)
incubated
;thelate
with
75μmol/L
apoptosis
quercetin
,e
was
(
:Quercetin
defined
0,25,
as
50
100
PI
,
μmol/L.
(
75
+)
,100
AnnexinV-FITC
μmol/L)for
C:Apoptosis
rates
jor
rreprentsmeanvaluesof
cant
factors
between
which
the
affected
twofactors
the
,
apoptosis
quercetin
of
concentrations
HL-60cells,
图1槲皮素作用
and
1)P
times
<0.001.
rcetinconcentrationisoneofthema⁃
24
of
h
action
D:
及48
,
Interaction
h
P
后
<0.01.
effectcontourmapshowsthattheinteractionixtremelysignifi⁃
HL-60细胞凋亡率变化
Fig.1TheapoptosisratesofHL-60cellsincubationwithquercetin
槲皮素(25μmol/L)组、高浓度槲皮素(50μmol/L)
组。将细胞与药物共同作用24h,加入自噬检测
pa
均荧光强度差异显著
)组、Rapamycin(1μmol/L
(F=30.13
)+3MA
,P
(
=
5
0.001
mmol/L
)。各组
)组平
试剂,采用流式细胞仪检测上述各组细胞中平均间多重比较得出以下结论:Rapa可诱导细胞发生
自噬荧光强度,采用单因素方差分析进行统计,结自噬,与空白对照组比,细胞内平均自噬荧光强度
果发现对照组、1μmol/L雷帕霉素(Rapamycin,Ra⁃高于空白对照组(P=0.001)。3-MA预处理细胞
第4期
肖洁,等.槲皮素调控AMPK活性诱导HL-60细胞自噬与凋亡
505
Quercetin25μmol/LQuercetin50μmol/L
槲皮素(50μmol/L)组与空白组比较,差异有统计
学意义(P<0.001)。加或不加自噬抑制剂3-MA
(5mmol/L),槲皮素诱导的细胞自噬有明显变化,
自噬抑制剂3-MA能够抑制槲皮素诱导的细胞自
24h
噬
2.2.3
(图3B)。
细胞中
蛋白免疫印迹法检测槲皮素处理后
LC3Ⅱ/Ⅰ的变化
LC3是目前最明确贯穿
HL-60
整个自噬过程并能出现在晚期自噬溶酶体中的自
噬相关蛋白,自噬激活时,LC3-Ⅰ在泛素样反应
48h
酶的作用下与磷脂酰乙醇胺偶联生成
LC3-Ⅰ
LC3-Ⅱ
外膜。LC3Ⅱ/Ⅰ
定位于胞质内,
比值的变化能够反应细胞内自噬
LC3-Ⅱ定位于自噬体的内
。
水平的高低。将细胞分为空白对照组、槲皮素
(25μmol/L)组、槲皮素(50μmol/L)组、槲皮素
图2槲皮素诱导HL-60细胞内自噬小体生成
Fig.2QuercetininducedautophagyinHL-60cells
(
μmol/L
25μmol/L
收集各组细胞,
)+3-MA
)+3-
(5
MA
mmol/L
(5mmol/L
)组。药物处理
)组及槲皮
24
素(
h
50
后
后,Rapa诱导的细胞自噬被抑制,与Rapa组比较,
差异有统计学意义(P<0.001);与空白对照组比较
Ⅱ/Ⅰ
差异无统计学意义(P=0.70,图3A)。
μmol/L
的
)
变
组、
化
槲皮素
。
Western
结果
(50
表
blot
明
μmol/L
,
检测各组细胞中
对
)
照
LC3
组各组之间
组、槲皮素(
LC3
25
μmol/L
自噬平均荧光强度在对照组、槲皮素(25
Ⅱ/Ⅰ
素处理后细胞内
比值存在差异
LC3Ⅱ/Ⅰ
(F=79.79
比值明显高于空白对照
,P=0.000),槲皮
组,且随着槲皮素浓度的增高,细胞内LC3Ⅱ/Ⅰ比
有统计学意义
)组及槲皮素
(F=
(
42.24
50μmol/L
,P<0.001
)组各组间的差异
)。槲皮素诱
值增高更明显。加入自噬抑制剂
HL-60
3-MA
导后HL-60细胞内平均自噬荧光强度均高于空白
对照组,且随着槲皮素浓度的增高,诱导自噬的效
应更加明显。组间多重比较,槲皮素(25μmol/L)
60细胞
细胞
24
4
h,
h
细
后,
胞
再予不同浓度槲皮素孵育
预处理
内LC3Ⅱ/Ⅰ比值降低(
HL-
组与空白组比较,差异有统计学意义(P=0.01);
0.000
P=
所抑制
)
(
,证明槲皮素诱导的细胞自噬能够被
表2,图4)。
3-MA
)
y
100
2)
1
3)
y
g
150
4)
5)
g
a
a
h
6)
h
p
p
o
o
t
t
80
u
u
a
a
f
f
o
100
o
y
y
60
t
i
t
i
s
s
n
n
e
e
t
t
40
n
n
i
50
i
n
n
a
a
e
e
M
20
Rapa
0
A
M
3-MA
-
-
+
-
+
+
Quercetin
0
B
3-MA
-
-
25
-
50
-
-
+
25
+
50
+
0.01vs
A:
control
HL-60
group
cells
;3
treated
)P=0.000
with1
vs
μmol/L
Rapa+3-MA
Rapamycinor
group.
both
B:HL-60
with3-MA
cellsuntreated
for24h(
or
n=
treated
3).1)
with
F=
quercetin
30.13,
(
P
25
=
,
0.001
50μmol/L
among
)
each
orboth
group
with
;2
3-MA
)P=
0.001
for48
,
h
5
(
)P
n=
=
3
0.002
).The
vs
difference
quercetin25
are
μmol
significant
/Lgroup
between
,6)P
the
<0.001
groups
vs
which
quercetin
were
50
treated
μmol/L
with
group.
differentconcentrationsofquercetin,4)F=42.24,P<
图3流式细胞仪检测各组细胞平均荧光强度
Fig.3Flowcytometry-badprofilingofautophagydetectioninHL-60ells
506
中山大学学报(医学版)第39卷
表2各组HL-60细胞中LC3Ⅱ/Ⅰ水平变化
Table2TheratioofLC3Ⅱ/ⅠinHL-60cells
Control
LC3Ⅱ/Ⅰ0.92±0.173.59
25
Quercetin/(μmol/L)
±0.70
1)
5.20
50
5mmol/L3MA+Quercetin/(μmol/L)
±0.42
1)
1.20±
25
0.20
2)
2.03±
50
0.60
3)
n=3,1)F=79.79,P<0.001amongdifferentconcentrationsofquercetingroups;2)P<0.001vsthesinglequercetin(25μmol/L)group;
3)P=0.000vsthesinglequercetin(50μmol/L)group.
表3槲皮素对HL-60细胞中p-AMPK/AMPK表达的影响
Table3TheeffectofQuercetinontheratioofp-AMPK/AMPKinHL-60cells
Control
Quercetin/(μmol/L)CompoundC25μmol/L+Quercetin/(μmol/L)
p-AMPK/AMPK0.44±0.121.08
25
±0.11
1)
1.30
50
±0.02
1)
0.56±
25
0.11
2)
0.43±
50
0.14
3)
n=3,1)F=48.84,P<0.001amongdifferentconcentrationquercetingroups;2)P=0.000vsthesinglequercetin(25μmol/L)group,3)P<
0.001vsthesinglequercetin(50μmol/L)group.
1)
2)
1)
2)
6
2)
u
2)
a
1.5
/
o
i
t
u
a
r
a
/
o
K
i
t
a
4
P
1.0
r
M
A
I
/
/
I
K
I
3
C
L
2
P
M
0.5
A
-
p
LC3
0
0.0
I
p-AMPK
LC3II
AMPK
GAPDH
Quercetin
GAPDH
3-MA
-
-
25μmol/L
-
50μmol/L
-
25μmol/L
+
50μmol/L
+
Compound
Quercetin
C
-
-
25μmol/L
-
50μmol/L
-
25μmol/L
+
50μmol/L
+
groups.
1)F=79.79,P<0.001amonggroups;2)P<0.001betweenP<0.001between
图4HL-60细胞中LC3Ⅱ/Ⅰ的变化
groups.
1)F=48.84,P<0.001amonggroups;2)
图5槲皮素对HL-60细胞内p-AMPK/AMPK表达的影响
Fig.4TheratioofLC3Ⅱ/ⅠinHL-60cellsFig.5QuercetinactivatedAMPKinHL-60cells
2.3
AMPK
槲
表达的变化
皮素处理后HL-60细胞中AMPK、p-
60
检测蛋白表达。结果发现,
细胞24h,收集细胞,提取总蛋白,
槲皮素与
Western
Compound
blot
C
HL-60
不同浓度槲皮素
细胞24h后
(
,
25
Western
μmol/L
Blot
、50
检
μmol/L
测细
)
胞
孵育
联合用药组与单用槲皮素组比较,p-AMPK的表
AMPK
达
析进行统计,
、p-AMPK
结果发现槲皮素能够浓度依赖性的
蛋白的变化。采用两因素方差分
中
AMPK
降低,CompoundC能够阻断槲皮素诱导
激活AMPK活性,使得AMPK的磷酸化水平增高
2.4
磷酸化(表3,图5)。
的
对细胞凋亡及自噬的影响
CompoundC抑制AMPK磷酸化后槲皮素
(F=48.84,P=0.000)。25μmol/LCompoundC不同浓度槲皮素加或者不加CompoundC孵
与不同浓度槲皮素(25、50μmol/L)共同孵育HL-育HL-60细胞24h后,采用流式细胞仪Annex⁃
第4期
肖洁,等.槲皮素调控AMPK活性诱导HL-60细胞自噬与凋亡
inV-FITC+Pl
507
皮素浓度依赖性的诱导
染色法检测凋亡细胞。结果显示:
HL-60细胞凋亡的发生
槲L
低,
)组比较,
P<0.001
LC3Ⅱ/Ⅰ
。槲皮素
比值下降,
(50μmol/L
细胞自噬程度降
)+CompoundC
(
Compound
F=316.41,P=0.000);槲皮素((
μmol/L
25μmol/L
)组,
)组
P<
LC3
0.001
Ⅱ/Ⅰ
。抑制
比值
AMPK
低于槲皮素(50
组比较,细
C(
胞
25
凋
μmol/L
亡率下
)组与槲皮素
降(P<0.001
(
25
)
25
μmol/L
。
μmol/L
)
槲皮素
)
+
皮素诱导细胞自噬的作用减弱(表5,
的活性后,
图7)。
槲
(50μmol/L)+CompoundC(25μmol/L)组与槲皮素
(
4
50
,图
μmol/L
6)。
)比较,细胞凋亡率下降(P<0.001;表
表5AMPK磷酸化受抑后槲皮素对HL-60细胞自噬的
影响
Table5Theautophagylevelinducedbyquercetinafter
表4AMPK磷酸化受抑后槲皮素对HL-60细胞凋亡的
AMPKphosphorylationinhibited
影响
Table4Theapoptosislevelinducedbyquercetinafter
Quercetin/(μmol/L)
Compound
AMPKphosphorylationinhibited
Quercetin/(μmol/L)
Compound
25
Quercetin/
C
(
25
μmol/L
μmol/L
)
+
Quercetin
C25μmol/L+
LC3Ⅱ/Ⅰ4.20±0.346.47
50
±0.260.36±
25
0.16
1)
0.37±
50
0.22
2)
255025
(μmol/L)
n=3,1)P<0.001vssinglequercetin(25μmol/L)groups;2)P<
Apoptosis16.65±1.8528.35±1.235.47±0.66
1)
15.68
50
±1.25
2)
0.001vssinglequercetin(50μmol/L)groups.
n=6,1)P<0.001vssinglequercetin(25μmol/L)groups;
2)P<0.001vssinglequercetin(50μmol/L)groups.
3讨论
不同浓度槲皮素加或者不加CompoundC孵
目前,联合化疗仍然是急性髓系白血病
育HL-60细胞24h后,蛋白免疫印迹法检测细胞
(acutemyelocyticleukemia,AML)治疗的主要方
中LC3Ⅱ/Ⅰ比值。结果显示:槲皮素诱导HL-60
法。传统的细胞毒性药物治疗急性白血病毒性
细胞自噬的作用与浓度相关,浓度越高,作用越
大,副反应多。槲皮素是植物来源的抗肿瘤药物,
明
L)
显
+Compound
(F=454.07
C(25
,P
μmol/L
=0.000
)组与槲皮素
);槲皮素(
(
25
25
μmol/
μmol/
具有低毒性的特点,近年来受到广泛的关注。有
研究发现槲皮素作为一种“分子靶向药物”,可以
Quercetin25μmol/LQuercetin50μmol/L
40
1)P<0.001between2groups
1)
30
%
/
e
t
a
1)
r
s
Quercetin
i
s
o
t
20
+Compound
25
C
μmol/LQuercetin
+Compound
50
C
μmol/L
p
o
p
A
10
Quercetin
0
CompoundC
25μmol/L
-
25μmol/L
+
50μmol/L
-
50μmol/L
+
图6AMPK磷酸化受抑后槲皮素对HL-60细胞凋亡的影响
Fig.6TheapoptosislevelinducedbyquercetinafterAMPKphosphorylationinhibited
508
中山大学学报(医学版)第39卷
8
1)
1)
蛋白酶Caspa被激活,导致细胞凋亡的发生。研
究证实,槲皮素可以直接诱导白血病细胞发生线
u
a
6
粒体应激产生凋亡效应实现其抗白血病作用
[11]
。
/
o
i
t
a
r
最新的研究表明:自噬作为Ⅱ型细胞程序性死亡,
I
/
4
I
I
3
C
是肿瘤细胞的死亡方式之一
[12-13]
。在真核细胞
L
2
LC3
0
中,自噬通过溶酶体途径降解损伤的细胞器及长
寿命蛋白等物质,对维持内环境稳定起到十分重
LC3
I
II
要的作用。在急性髓系白血病的研究中发现,硼
GAPDH
替佐米可以诱导急性髓细胞白血病发生自噬,通
过自噬途径加速FLT-3/ITD的降解,继而发挥其
Compound
Quercetin
C
25μmol/L
-
50μmol/L
-
25μmol/L
+
50μmol/L
+
抗白血病作用
[14]
。针对自噬途径寻找新的治疗靶
点是目前肿瘤研究的热点。有研究表明:凋亡和
图7
1)P
AMPK
<0.001
磷酸化受抑后槲皮素对
between2groups
HL-60细胞自噬的
自噬作为两种不同的细胞程序性死亡,可能存在
影响
共同的信号分子通路。
Fig.7Theautophagylevelinducedbyquercetinafter
凋亡及自噬都受细胞内能量代谢的调控,腺
AMPKphosphorylationinhibited
苷酸活化蛋白激酶
干扰肿瘤细胞中信号转导通路的关键靶点使细胞
AMPK
谢。AMPK
)是细胞的能量感受器,
(AMP-activated
由αβγ三个亚单位组成,
调节细胞能量代
proteinkina,
α-亚基N-末
死亡,对多种肿瘤细胞有生长抑制作用
[3-5]
。槲皮
端包含一个保守的
素可调节多种蛋白激酶如酪氨酸激酶、丝氨酸/苏
氨酸激酶等,从而诱导细胞凋亡
[6-7]
。在美国,其
172
缺氧的状态可能导致
)位点的磷酸化是其激酶活性所必需的。细胞
Ser/Thr激酶区,苏氨酸(Thr-
AMPK的活化
[15]
。肿瘤常伴
作为非处方药物(Difaprost
®
)用于前列腺癌的治
随能量代谢紊乱和AMPK激活抑制。因此,AMPK
疗;含有槲皮素的圆叶葡萄皮提取物治疗生化复
被视为治疗肿瘤的潜在作用靶点
[16]
。体内外研究
发前列腺癌的药物临床试验正在进行中
[8]
。槲
发
皮素是一种有应用前景的抗肿瘤药物。然而其
在急性髓系白血病中的研究非常有限,有文献报
mTOR
现,激活急性髓细胞白血病AMPK并抑制
去磷酸从而产生抑制肿瘤的作用,
的活性,可使得翻译起始因子
但对正常的髓
4E-BP1发生
道槲皮素能够阻滞急性髓系白血病细胞于G0/G1
系造血干细胞功能无影响
[17]
。研究发现白藜芦醇
期,诱导凋亡及保护性自噬的发生
[9]
,我们前期
能够通过AMPK信号通路调节细胞内能量代谢,
研究发现槲皮素对急性髓系白血病HL-60细胞
抑制糖酵解,增加葡萄糖有氧氧化,增强肿瘤细胞
株有抑制增殖的活性
[3]
,但其具体的机制有待进
的氧化能力发挥抗肿瘤的作用
[18]
。本研究发现,
一步阐明。
槲皮素能够活化HL-60细胞中AMPK,导致细胞
本研究发现,槲皮素能够诱导白血病HL-60
内p-AMPK的表达增加。这一过程能够被AMPK
细胞株发生凋亡,其对凋亡的影响呈时间及浓度
特异性的小分子抑制剂CompoundC所阻断。但
依赖性。同时,通过电镜、WesternBlot等检测方
采用CompoundC阻断AMPK的活化后,槲皮素对
法我们还发现,槲皮素能诱导HL-60细胞株发生
自噬。我们认为,槲皮素通过诱导HL-60细胞同
HL-60
素可能通过激活
细胞凋亡及自噬的诱导作用均减弱。槲皮
AMPK实现对HL-60细胞凋亡及
时发生凋亡和自噬,从而发挥其抗白血病作用。
自噬的调控。
但是其诱导凋亡及自噬的具体信号通路及信号分
综上所述:槲皮素作为一种植物来源的低
子有待进一步明确。
毒性药物,具有抗肿瘤的作用。槲皮素可能通
自噬与凋亡属于两种不同的细胞程序性死
过激活细胞内AMPK,影响细胞内能量代谢的变
亡。自噬、凋亡与肿瘤的发生、发展以及治疗有着
化,导致细胞凋亡和自噬的发生从而发挥抗白
非常密切的关系
[10]
。细胞凋亡是受基因调控的精
血病作用。但其具体的分子通路还有待进一步
确过程,当细胞接受体内外信号刺激后,半胱氨酸
的阐明。
第4期
肖洁,等.槲皮素调控AMPK活性诱导HL-60细胞自噬与凋亡
509
参考文献
[10]Denton
ronToxicol
D,
,
Nicolson
2017,32
S
(
,
7
Kumar
):1857-1868.
athbyau⁃
[1]MesrJG,HopkinsRG,tinme⁃
tabolites
tophagy
DeathDiffer
:Facts
,2012
and
,19
apparent
(1):87-95.
artefacts[J].Cell
teoblasts
up-regulate
[11]ChengS,GaoN,ZhangZ,tininduc⁃
[2]
Biochem
Granato
,
isolated
M
2015
,Rizzello
,116
from
the
(
C
9
fetal
antioxidant
)
,
:
Gilardini
1857-1866.
ratcalvaria
respon
[J].J
in
Cell
os⁃
MontaniMS,et
es
al.
tion
tumor-
ofMcl-1
lective
and
apoptosisthroughdownregula⁃
primary
Quercetin
AKT/mTOR
effusion
induces
and
lymphoma
apoptosis
STAT3signaling
cellsby
and
inhibiting
autophagy
PI3K/
in
cerRes.2010,16(
activation
23):5679-5691.
ofBax[J].ClinCan⁃
[12]SlatorC,MolphyZ,McKeeV,ringau⁃
Nutr
tophagic
肖洁,
Biochem
牛国敏,
,2017
尹松梅,
,41(9)
等
:
.
124-136.
pathways[J].J
[3]槲皮素抑制HL-60
opmental
cell
therapeutic
deathwith
[J
a
].
di-mangane
RedoxBiol,
(II
2017
)devel⁃
(2):150-161.
,12
细胞增殖与诱导凋亡机制探讨[J].中华肿瘤防
[13]BikasAD,JennK,PatelA,e-de⁃
治杂志,2014,21(21):1685-1690.
XiaoJ,NiuGM,
privation
metformin
increas
quercetin
].Endocr
thyroid
Relat
cancer
Cancer
cell
,
nsitivity
2015,22
to
(6):919-932.
[J
eration
[14]LarrueC,SalandE,BoutzenH,some
[4]
Treat
Khan
,
F
2014
on
in
HL-
inducing
Yin
,Niaz
,21
K
(
60
,
21
Maqbool
)
cells
apoptosis
SM,et
:1685-1690.
[J].
and
al.
Chin
inhibiting
Mechanismof
JCancer
prolif⁃
Prev
F,lartar⁃
inhibitorsinduce
gets
cells
FLT3-ITD
[J].Blood
degradation
,2016,
through
127(7
au⁃
Anupdate
underlying
[J].Nutrients
theanticancer
,2016
effects
,8(9)
of
:529-545.
quercetin:
882-892.
tophagyinAML):
[15]李娜,贺涓涓,汪倩,等.CompoundC抑制腺苷
[5]LeiCS,HouYC,PaiMH,sofquerce⁃
酸活化蛋白激酶的磷酸化后对缺氧预处理的影
tin
响及其机制[J].中山大学学报(医学科学版),
associated
combined
andinvivo
factors
with
studies
of
anticancer
[J]
gastric
.JNutr
cancer
drugson
Biochem
cells
metastasis-
,
:
2018
Invitro
(9):105-113.
,51
Li
2016
N,
,
He
37(
JJ
2)
,
:
Wang
168-174.
Q,andmechanism
[6]Tomas-HernándezS,BlancoJ,RojasC,etal.
of
ing
phosphorylated
Resveratrol
withitsspecial
AMPK
tion-
Univ(
inhibitor-
onhypoxia
MedSci),
compound
precondition⁃
2016,
C
37
[
(
J]
2):
.J
cercells
induced
potently
toapoptosis
autophagy
counteractsquercetinstarva⁃
[
and
J].
nsitizes
MolNutr
hepG2
FoodRes
can⁃
[16]
168-174.
SUNYat-n
BungardD,FuerchBJ,ingkina
]
2018
Kim
,
JH
62
,
(
Kim
5):1700610.
,
[tinnsitizespancreatic
AMPK
cancer
histone
activates
H2B
stress-promotedtranscriptionvia
JNK-mediated
cellsto
cFLIP
TRAIL-
turnover
induced
[J
apoptosis
].IntJBiochem
through
[17]
329
Green
(5996
AS
)
,
:1201-1205.
phosphorylation[J].Science,2010,
ChapuisN,MacielTT,
[8]
Cell
Paller
Biol
CJ
,
,
2016
Rudek
,78
MA
(9)
,
:
Zhou
327-334.
XC,I
LKB1/AMPK
study
sor
biochemically
ofmuscadine
recurrent
grape
prostate
skinextract
cancer:
in
Safety
men
,
with
tol⁃
repression
activity
of
in
signaling
mTOR-
acutemyeloid
pathway
dependent
leukemia
hastumorsuppres⁃
oncogenic
through
mRNA
the
2015
erability
,75
,
(14
and
):
do
1518-1525.
determination[J].Prostate,
4273.
translation[J].Blood,2010,116(20):4262-
[18]SaunierE,AntonioS,RegazzettiA,a⁃
[9]ChangJL,ChowJM,ChangJH,tinsi⁃
multaneously
trol
pa-mediated
inducesG0/G1-phaarrestand
ruvate
revers
dehydrogena
theWarburg
complex
effectbytargetingthepy⁃
[J].SciRep,2017,7(1):6945-6956.
incoloncancercells
tophagyinhuman
crosstalk
leukemia
between
HL-60
apoptosis
cells[J]
and
cas⁃
.Envi⁃
au⁃
(编辑孙慧兰)
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