酵母单杂分析
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酵母单杂交技术是体外分析DNA与细胞内蛋白质相互作用的一种方法，通过对酵母细胞内报告基因表达状况的分析来鉴别DNA结合位点并发现潜在的结合蛋白基因，或对结合位点进行分析。运用此技术能筛选到与DNA结合的蛋白质，并可直接从基因文库中得到编码该蛋白质的核苷酸序列而无需复杂的蛋白质分离纯化操作，故在蛋白质研究中具有一定的优势；而且酵母属真核细胞，通过酵母系统得到的结果比其它体外技术获得的结果更能体现真核细胞内基因表达调控的情况。
【实验目的】
了解酵母单杂交的基本原理和应用，掌握酵母单杂交的主要步骤及注意事项，学会酵母感受态的制作与转化，基因文库的构建及筛选。
【实验原理】
酵母单杂交方法是根据DNA结合蛋白（即转录因子）与DNA顺式作用元件结合调控报告基因表达的原理来克隆编码目的转录因子的基因（cDNA）。该方法也是细胞内分析鉴定转
录因子与顺式作用元件结合的有效方法。如图所示，将已知的特定顺式作用元件构建到最基本启动子（minimal promoter，Pmin）上游，Pmin启动子下游连接报告基因。进行cDNA融合表达文库时，编码目的转录因子的cDNA融合表达载体被转化进入酵母细胞后，其编码产物（转录因子）与顺式作用元件结合，就可以激活Pmin启动子，并促使报告基因表达。根据报告基因的表达，筛选出与已知顺式元件结合的转录因子。
“Matchmaker Gold Yeast One-Hybrid Library Screening System”提供了一个简单高效的构
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建cDNA文库并进行酵母单杂交筛选的方法，它使用aureobasidin A抗性基因作为报告基因，筛选效率高，背景低。单杂交筛选是从酵母双杂交筛选发展而来，利用单杂交筛选可以对cDNA文库进行筛选直接获得与目的顺式作用元件相结合的蛋白质。
图2 用Matchmaker Gold One-Hybrid System筛选protein-DNA相互作用的原理
The Matchmaker Gold One-Hybrid Library Screening process主要包括以下步骤：
1 将已知序列（bait）克隆到zip code是什么意思pAbAi载体。
2 pBait-AbAi质粒转化Y1HGold酵母菌株，使其与酵母基因组发生重组，生成bait/reporter酵母菌株。
3 检测Y1HGold bait菌株AbAir基因的本底表达水平。
4 合成cDNA并通过cDNA和pGADT7-Rec载体共转化酵母进行细胞内同源重组筛选cDNA文库。
5 筛选结果的验证和分析。
【实验准备】
1 仪器设备
微量取液器（2.5 L；20 L；50 L；100 L；200 fuelgaugeL；1000 L）、PCR仪、低温离心机、台式离心机、CHROMA SPINTM+TE-400纯化柱、琼脂糖凝胶电泳系统、凝胶成像系统、恒温摇床、恒温孵箱、通风橱、制冰机、振荡器、恒温金属浴、酒精浴、无菌接种环、10 cm培养皿、15 cm培养皿等。
2 实验材料
Y1HGold酵母株、TOP10大肠杆菌菌株、各种方法提取的RNA、pGADT7-Rec质粒和pBait-AbAi质粒等。
3 主要试剂
（1）Advantage 2 PCR试剂盒、Easy Yeast Plasmid Isolation试剂盒、Matchmaker Inrt Check PCR Mix 1、Matchmaker Inrt Check PCR Mix 2。
（2）各种基础培养基和营养缺陷培养基：minimal SD ba，minimal SD agar ba，YPD medium，YPD agar medium，-Leu DO supplement，-Ura DO supplement，腺苷酸（adenine），PEG8000，carring DNA，aureobasidin A，LB培养基，氨苄西林。
（3）NaCl溶液（0.9%）、sodium acetate （3 mol/L）、50% PEG、10×LiAc（1 mol/L）、10×TE buffer、DTT（100 mmol/L）、RNaH、限制性内切酶。
【实验方法】
1 pBait-AbAi载体的构建（酵母报道子的构建）
注：酵母报道子（pBait-AbAi）包含目的顺式作用元件的一个或多个拷贝，且插入到pAbAi载体AbAir报告基因的上游。大量研究表明最有效的构建应包含目的DNA三个以上的首尾连接的拷贝。首尾连接的拷贝产生方式很多，但对于长度小于20 bp的调控元件，人工合成寡核苷酸是最方便可靠的途径。
（1）设计并合成包含目的序列的两条反向平行的寡核苷酸序列，且两端加上与pAbAi载体酶切产物一致的粘性末端（建议合成一个目的序列的突变序列作为对照，以排除可能的假阳性）。
（2）用TE buffer溶解寡核苷酸至终浓度bgg100 mol/L。
（3）将正向链和反向链按照1:1的比例混合（退火后的双链寡核苷酸最大浓度为50 mol/L）。
（4）95 C保温30 s，去除二级结构。
（5）72 C保温2 min，37 C保温为您效劳2 min，25 C保温2min。
注：缓慢退火，有助于双链寡核苷酸的形成。
（6）冰上放置。退火后的产物可贮存在-20 C冰箱备用。
（7）酶切1 L pAbAi载体，用凝胶回收纯化或柱纯化的方式纯化酶切产物。
注：回收前，可用琼脂糖凝胶检测是否酶切完全。
（8）将退火后的寡核苷酸稀释100倍至终浓度为0.5 mol/L。
（9）在连接反应管中加入如下成分：
pAbAi载体（50 ng/ L） 1小语种招生.0 L
annealed oligonucleotide （0.5 mol/L） 1.0 L
10×T4 DNA liga buffer 1.5 L
BSA（10 mg/mL） grea gun 0.5 L
Nuclea-free H2O 10.5 L
T4 DNA liga （400 U/ L） 0.5 L
总体积 15 L
注：如果有必要，可用1 L nuclea-free H2O代替寡核苷酸作为阴性对照。
（10）将反应体系室温放置连接3 h，转化E coli，采用常规方法检测阳性克隆。
注：可用酶切或测序进行检测。
2 质粒转化酵母细胞，生成Bait-Reporter酵母菌株（图）
图3 Bait-Reporter酵母菌株生成原理示意图
（1）用BstB Ihalloween或者Bbs I酶切2 L pBait-AbAi，pMutant-AbAi，p53-AbAiindeed是什么意思质粒，使其在URA3基因处断开，纯化酶切产物。
（2）按Matchmaker Yeast Transformation System 2的步骤用1 l酶切后的质粒转化Y1HGold酵母。
