取小鼠脑组织

更新时间:2023-06-01 23:10:11 阅读: 评论:0

黄公望
丁香园上面总结的方法,排版有点乱。
其实过程与大鼠近似,我的经验是:
1. 材料准备;大剪刀、眼科剪、眼科镊、大镊子、滤纸、竹签等;
2. 步骤:处死小鼠,取头颅;
剪开皮肤,漏出颅骨;
用大尖镊子夹住两侧眼眶,用眼科剪稍剪除颅骨中线;
再用眼科镊夹住颅骨从内向外夹,从下向上逐步去除颅骨;
当全脑露出时,再用眼科镊去除脑膜和血管;
然后用竹签从嗅球处向下取出全脑,即可。
3. 注意事项:用力轻柔,否则容易弄破脑部;
用剪刀剪颅骨时,一定要贴壁向上剪,否则容易剪破脑部;
去除脑膜时,不能硬拉,否则容易弄破大脑;
取出全脑时应把头顶朝下,用竹签轻轻取出,离桌面也不要太远、高;
若留病理,建议一定要取完整无损的大脑。
做免疫组化的话,稍微麻烦一点儿,因为脑组织含水量多,要固定的好,就需要先灌注。
先麻醉小鼠
剪开胸腔,找到心脏,从心尖入针,剪开右心耳
先用生理盐水灌注直到从心耳流出来的水清亮了
再改用固定液(一般是4%多聚甲醛)灌注至小鼠四肢僵硬
小鼠只需要用注射器就行了,我做的25~35g的小鼠一般用50mLNS+30mL多聚甲醛。具体步骤:常规麻醉小鼠,将其固定,用剪刀剪开胸部皮肤,暴露出皮下组织,剪开时注意钝性分离,以免误伤。然后用镊子提起剑突,用剪刀剪开胸腔,剪断两侧肋骨,暴露整个
胸腔,小心误伤肺及心脏、大血管。用镊子撕开心包膜,暴露心脏,用眼科剪剪开右心耳,然后提起心尖将准备好的生理盐水注射器插入左心室,注射,注射时小心针头滑脱。生理盐水灌流至肺和肝的颜色都变成灰白色即可。然后用多聚甲醛灌流,针孔最好是同一个,多聚灌流时小鼠四肢会抽搐,待抽搐结束,小鼠僵硬即可。取下小鼠,用剪刀在颈部离断头颅,用剪刀在小鼠头颅中间皮肤剪一刀,将两边皮肤向下翻用手捏住,暴露整个颅骨,用眼科剪从脊髓端插入椎孔,沿着颅正中线剪开颅骨,注意剪刀向上翘一些,以免误伤脑组织,剪开后用弯眼科镊分离颅骨,小心分离,直至暴露整个大脑,然后用弯镊伸入颅底离断颅底神经,就可以取出整个脑子了。放多聚里固定24h后包埋切片即可。
具体操作如下:
实验操作步骤:
1)  小鼠称重,以每克小鼠0.0025ml 4%戊巴比妥钠剂量的实施腹腔麻醉。也可以用10%的水合氯醛,3-5ul/g腹腔注射麻醉。
2)  将麻醉的小鼠仰放在操作台上,去毛。学习金字塔理论
3)  解剖小鼠,暴露心脏。
4)  找到心尖部,左手用镊子提起心尖部,右手或左手将灌流针刺破心尖部进针约 0.5cm(最好是用小点的针头,止血钳固定针尖,剪开右心耳。
5)  将灌流器的导管部开口放到生理盐水中里,打开灌流器灌流,直到从右心耳流出的液体为无色,同时小鼠肝脏色淡,肠管肿胀为止,停止灌流。没有灌流器的用注射器或者吊瓶都可以。
6)  将灌流器的导管小心的移至4%多聚甲醛或2.5%戊二醛中,注意不要产生气泡,开始灌流。此时如果看到小鼠四肢突然紧张,尾部卷曲,说明达到固定效果。
7)  灌流大约5分钟,灌流液用量约150毫升左右结束。(小鼠的用量没这么多)
8)  取材。取实验所需的标本。
9)  将取出的材料放到事先准备的多聚甲醛(戊二醛)中固定2——4小时后移至30%蔗糖中4度冰箱保存过夜。
我们实验室鼠脑冰冻切片采用4%的多聚甲醛固定,小鼠直接灌注saline20ml,4%多聚甲醛20ml经左心室固定然后取材在4度4%多聚甲醛后固定4-6h,浸20%-30%糖沉底,就可以切片,切片首先需要冰冻切片机,我们的leica1900的,不知道lz那里有没有这个机子,还有一种原始的自己刷冻台的那种,比较麻烦,切片厚度大概选择20-40um差不多
开胸时要把肋骨提起,大U字剪开左右肋弓后掀起,血管钳固定一下(以免挡遮视野);平头针插入后稍许打开输液器开关并迅速剪开充盈的右心耳(可见血涌出),用血管钳将心室和平头针一起钳夹固定再推(但滴速也不能太快以免血管被冲破,使灌流液流进肺里)。另:开胸时动作尽量要快;针头可以不插入主动脉,留置于左室也行。
试剂名称:4%多聚甲醛-磷酸二氢钠/氢氧化钠
所需药品及剂量:A液:多聚甲醛    40g
张沄熙  蒸馏水    400ml
  B液:Na2HPO4·2H2O  6.88g
  蒸馏水        300ml
  C液:NaOH       3.86g
  蒸馏水       200m
操作过程:A液最好在500ml的三角烧瓶中配制,至多聚甲醛完全溶解后冷却待用。注意,在溶解多聚甲醛时,要尽量避免吸入气体或溅入眼内。B液和C液配制好后,将B液倒入C液中,混合后再加入A液,以1n NaOH或1N HCl 将pH调至7.2~7.4,最后,补充蒸馏水至1000ml充分混合
应用范围:光镜和电镜免疫细胞化学研究,用于免疫电镜时,最好加入少量新鲜配制的戊二醛荷花作文
保存期限及温度:4℃冰箱保存备用,长期保存
我在很多方面是个新手,经常在园子里逛,学到了很多东西,但同时也看到了关于同一个问题有很多不同的回答,我想结合自己的实验,希望各位老师能就我提出的问题说说自己的经验看法,给我启示,因为很多自己未做过,怕自己哪里操作不恰当而影响实验结果,非常感谢各位老师的不啻赐教!
首先,我做的是大鼠(体重约230-250g),模型是大脑中动脉栓塞,在不同的时间点取脑标本,准备做荧光实时定量PCR、Western blot和冰冻切片,我提的问题主要是在于脑标本的取和存方面。
问题如下:
荧光实时定量PCR方面:
1、标本需要灌注么,有战友说不需要,你是怎么做的,有灌注的话什么溶液灌注,温度?
2、标本取下后液氮速冻,然后转-80度冰箱,这样保存一般可以多久?
3、抽提后的中RNA放-80度冰箱会很容易降解么,还是说要放液氮?
Western blot方面:
4、标本用什么溶液灌注,温度?
5、同一个标本可以同时用于RT-PCR和Western blot检测么?(如果灌注手段一样的话)
冰冻切片方面:
6、灌注冲血用什么溶液,温度?
7、4%多聚甲醛灌注固定一般灌注多常时间?多少毫升?
8、4%多聚甲醛后固定时间是多久为宜?
猫大便带血9、蔗糖梯度脱水,蔗糖是用什么配置的,PBS还是PB,浓度是多大的?蔗糖梯度是15%到20%再30%么?在每种浓度里沉底后就换另一种还是?
10、我试做过一次,做法为:常规多聚甲醛灌注固定后,再多聚甲醛后固定过夜,然后30%的蔗糖脱水,这些都是用0.1M的PBS配的,结果发现蔗糖脱水3天了都还没沉底(中间换过一次蔗糖溶液)。有战友提议可以切几块后脱水效果会更好,如果你有跟我做一样的模型标本,你是怎么处理的,如何切?
11、还有什么需要注意的地方或tips。
6、阳台水池灌注冲血用什么溶液,温度?
用的是含有肝素钠的生理盐水。每瓶500ml的生理盐水加入80mg的肝素钠,肝素钠要避光保存,而且必须使用前临时加入到生理盐水中。肝素钠生理盐水需要用4度预冷。我们用注射器推,大概推100ml,10min。就可以将血液冲干净。速度要自己掌握。
每支肝素钠每亳升含12500U,相当于100mg,用20ml生理盐水稀释,分装成40支,消毒备用(4℃贮存)。临用时,注射器吸取肝素钠溶液一支,而后将肝素液来回抽动,使针筒局部湿润,多余肝素液全部排出弃之,注射器内死腔残留的肝素液即可抗凝。
纯的肝素10 mg能抗凝100 ml血液(按1mg等于100个国际单位,10个国际单位能抗凝1ml血液计)。如果肝素的纯度不高,或过期,所用的剂量应增大2~3倍。用于试管内抗凝时,一般可配成1%肝素生理盐水溶液,取0.1ml加入试管内,加热80℃烘干,每管能使5~10 ml血液不凝固。作全身抗凝时,一般剂量为:大鼠2.5~3 mg·(200~300g体重)-1,兔或猫10 mg·kg-1,狗5~10 mg·kg-1。如果肝素的纯度不高,或过期,所用的剂量应增大2~3倍。
7、4%多聚甲醛灌注固定一般灌注多常时间?多少毫升?
一般多聚甲醛灌注20min,100ml。标准是动物的尾巴会甩动,全身四肢收缩(这是因为蛋白变性所致),一般看起来像动物活过来了一样。随后就可以将动物的头断掉,来取脑了。
8、4%多聚甲醛后固定时间是多久为宜?
这个不一定。对于石蜡切片,可以固定很久。但是对于冰冻切片,估计是隔夜或者24h。但是先固定一晚上后再取出来,将不需要的大脑组织切掉,比如脑干、小脑等等。擦干,放在蔗糖溶液里。
9、蔗糖梯度脱水,蔗糖是用什么配置的,PBS还是PB,浓度是多大的?蔗糖梯度是15%到20%再30%么?在每种浓度里沉底后就换另一种还是?
蔗糖用0.1M的PB配置。我一般配20%和30%两个浓度。我个人感觉每个浓度需要沉糖48h。至少我发现24h是不够的。沉糖必须完全沉底。早用英语怎么说
10、我试做过一次,做法为:常规多聚甲醛灌注固定后,再多聚甲醛后固定过夜,然后30%的蔗糖脱水,这些都是用0.1M的PBS配的,结果发现蔗糖脱水3天了都还没沉底(中
间换过一次蔗糖溶液)。有战友提议可以切几块后脱水效果会更好,如果你有跟我做一样的模型标本,你是怎么处理的,如何切?
我不知道你是看哪个部位的表达。如果是海马的话,我建议从前囟-1.40mm到前囟-6.30mm左右。
确实提的问题很多,看样子还是有所思考,值得赞扬,我也只能说出我个人的经验,讲几个大概的原则,具体细节还要你自己在实验中体会。
RT-PCE与WB都是分子生物学方面的实验,可以共用一个标本,一般不需要灌注,文献上都如此,需要新鲜的脑组织,液氮速冻,-80度保存,半年应该没问题,既然是MCA栓塞,那就要取MCA供血区域,嗅极后3-9mm,如果要分半暗带,园子里有类似的帖子,可查找。至于不灌注,存留的血液可能会影响结果,我一般断头后用生理盐水把血液冲洗干净,然后再敲开露骨取脑,这样,效果会好些。
至于你的脑组织灌注固定,蔗糖脱水3天还没沉底,可能与脑组织太大及梯度脱水有关,我一般在脱水前用双面刀片沿冠状面将多余的脑组织休掉,20%蔗糖1天,30%蔗糖2天,总共3天就足够了,希望对你有帮助。
你在断头后用生理盐水把血液冲洗干净,然后再敲开露骨取脑,我想没通过灌注应该没办法冲掉脑内血管的血吧?

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