lonza电转protocol实验操作步骤

更新时间:2023-05-12 02:49:25 阅读: 评论:0

lonza电转protocol实验操作步骤
LONZA 4D-Nucleofector细胞核转染系统,即原德国Amaxa 4D-Nucleofector核转系统,结合电穿孔技术和细胞特异性转染液,通过系统内置优化的转染程序,将外源基因⾼效导⼊⽬标细胞的细胞质中,并可直接⼊核,整合到细胞染⾊体中。(微信搜索”泽平科技“公众号发送电转protocol获取教程视频)
Nucleofector核转系统可⽤于免疫细胞、⼲细胞、神经细胞、内⽪细胞等较难转染的原代细胞和各类细胞系中,其不依赖于病毒感染、不依赖于细胞有丝分裂,可加快基因表达,已成功转染1200余种细胞系、130余种原代细胞,多数细胞系转染效率可⾼达50-70%,部分原代细胞转染效率可超过90%。⽬前,LONZA 4D-Nucleofector已⼤量应⽤于CAR-T细胞的研究中。
图.⽤Nucleofector细胞核转染系统,将GFP标记的质粒转染新⽣⼉⽪肤成纤维细胞(NHDF-neo),2⼩时后⽤3.5% PFA 固定,共聚焦显微镜可观察到GFP蛋⽩在细胞核内表达。
LONZA 4D-Nucleofector细胞核转染系统,配备多种转染模块,可满⾜不同细胞类型、不同数量、不同通量的转染实验需求;
电转过程中配合使⽤不同细胞类型专⽤转染试剂,转染效率远⾼于传统电转仪;
采⽤由新型⾼分⼦聚合物制造的电极,相⽐传统铝制电转杯,杜绝⾦属离⼦毒害,细胞转染后成活率更⾼。
为提⾼细胞核转染效率,优化转染条件必不可少,相⽐其他品牌,LONZA可提供全球共享的数据库,
可检索到700种以上的细胞转染数据和操作⼿册,除转染操作指导外,还提供细胞来源、传代、⽣长条件、培养基、转染后细胞培养基等各类技巧,⼤⼤节省摸索时间和试剂耗材损耗。
4D-Nucleofector细胞核转染平台,在⼩体积转染条件优化成功后,可不改变转染条件,直接⽤于⼤体积转染中,⼀次获得最多1*10^9数量的细胞,⼤⼤缩短实验时间。
LONZA 4D-Nucleofector细胞核转染系统,由1个主机加不同模块构成,各模块可单独配置:
1.C模块(必选):细胞核转染系统主机,即核⼼模块(Core unit),内置各类细胞转染程序。
2.X模块(可选):最常选择的⼩体积转染模块,⽤于各类悬浮细胞转染。允许使⽤2个电极杯和1个中通量16孔电极板条。其中电极杯为100uL体系,适⽤于2*10^5⾄2*10^7数量细胞;16孔电极板条各孔为20uL体系,适⽤于2*10^4⾄1*10^6数量细胞,可同时转染16个样品。
3.Y模块(可选):⽤于各类贴壁细胞的原位转染,⽆需消化细胞。允许使⽤1个24孔电极板,各孔为350uL体系,可同时转染24个样品。
4.LV模块(可选):⽤于⼀种细胞的⼤规模连续转染。允许使⽤电转盘,其中⼩体积电转盘允许⼿动注射填充1mL,适⽤于1*10^7⾄
1*10^8数量细胞;更⼤体积的电转盘允许以1mL体积不断进样,配合储液罐或储液袋,连续处理20mL
体积,最⾼可转染10^9数量细胞。
5.96孔模块(可选):⽤于⾼通量细胞转染,需要同时配置X模块。允许使⽤1个可拆卸的96孔电极板,由6个16孔电极板条组成,适⽤于2*10^4⾄1*10^6数量细胞,可同时转染96个样品,经常⽤于摸索转染条件。
相关⽂献
Ribonucleoprotein Transfection for CRISPR/Cas9-Mediated Gene Knockout in Primary T Cells.(Curr Protoc
Immunol,2019,124(1):e69)
Engineering of CRISPR-Cas12b for human genome editing.(Nature,2019,10(1):212)
CRISPR-Cas9 genome engineering of primary CD4+ T cells for the interrogation of HIV-host factor interactions.(Nat Protocols,2019,14(1):1-27)
Bacteria-free minicircle DNA system to generate integration-free CAR-T cells.(J Med Genetics,2019,56:10-17)
Guide Swap enables genome-scale pooled CRISPR-Cas9 screening in human primary cells.(Nat Methods,2018,15(11))
Nucleofection with Plasmid DNA for CRISPR/Cas9-Mediated Inactivation of Programmed Cell Death Protein 1 in CD133-Specific CAR T Cells.(Hum Gene Ther,2018)
Optimized RNP transfection for highly efficient CRISPR/Cas9-mediated gene knockout in primary T cells.(J Exp
Med,2018,215(3):985-997)

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