间充质干细胞源性外泌体miRNAs参与
损伤心血管细胞修复的研究进展
李兰兰 李 宏 成 敏△
(潍坊医学院,基础医学院,潍坊261053)
期末考试摘要 外泌体是由各种组织和细胞所释放的细胞外囊泡,在细胞之间充当各种分子(包括蛋白质,脂质和RNA)的载体,从而调节或干预特定的生理过程。MiRNAs是一类小的非编码RNA,能够靶向多个mRNA并诱导其降解或翻译抑制以调控相关基因表达。目前对外泌体内微小RNA(miR NAs)的研究最为广泛。间充质干细胞(MSCs)是一种多能干细胞,因其具有多向分化潜能、造血支持和促进干细胞植入、免疫调控等特点,被视为理想的种子细胞,用于延缓、治疗衰老和病变引起的组织器官损伤。近年研究证实,MSCs还可通过释放的外泌体发挥其临床治疗作用。越来越多的证据表明,MSCs源性外泌体内miRNAs参与了动脉粥样硬化、高血压、糖尿病血管并发症和慢性肾脏疾病等心血管细胞损伤的修复,本文就MSCs源性外泌体miRNAs在损伤心血管细胞修复中的作用及机制进行总结。
119宣传日关键词 间充质干细胞;外泌体;miRNAs;心血管损伤
中图分类号 R543
间充质干细胞(mesenchymalstemcells,MSCs)是一类具有自我更新和多向分化能力的细胞,可分泌多种调节血管生成、免疫应答的细胞因子和生长因子来发挥其调节作用,并且能对心血管损伤起到一定的修复作用。大量研究证实,干细胞释放的外泌体可以通过递送它们的内容物来调节靶细胞的功能[1]。外泌体(exosomes)是一种在生理和病理生理条件下从各种组织和细胞中释放并作用于细胞间通讯和调节器官功能的纳米级细胞外囊泡。外泌体通过将内容物转运到受体细胞,进而改变了受体细胞的功能,被认为是细胞间信号交流的第三种途径[2]。而微小RNA(microRNAs,miRNAs)是外泌体中的一种主要成分,在进行远距离的信息传递、细胞分化、生物发育及疾病发生与发展过程中具有重要作用,因而受到学者们的极大关注。外泌体在调控心血管生成方面的作用也得到众多研究者的证实,其中外泌体内miRNAs可通过直接或者间接作用于心血管生成相关基因的表达,进而影响细胞成血管能力,在参与损伤心血管细胞修复过程中发挥重要的作用。结合近年来有关外泌体的研究,本文总结了MSCs源性外泌体miRNAs在心血管细胞损伤修复中的作用及相关机制。
一、外泌体与miRNAs
外泌体是一类大小在30到150nm之间,内含各种核酸、蛋白质和脂质成分,能够穿梭在起源细
胞和靶细胞之间的具有脂质双分子层的微小囊泡,其表面蛋白分子主要有CD63、CD81、CD9、TSG101和HSP27等。外泌体广泛存在于各种体液中,包括血液、眼泪、尿液、唾液、乳汁及腹水等,并携带和传递重要的信号分子,影响细胞的生理状态并与多种疾病的发生发展密切相关。
1960年代后期首次描述了在哺乳动物组织或液体中,有囊泡在细胞周围存在,但直到21世纪初期才提出通用术语“胞外囊泡”(extracellularvesi cle,EV)来定义所有的由脂质双层包围的胞外结构。1980,研究者发现EV可以通过质膜向外出芽或通过细胞内内吞运输途径形成,其中这种途径涉及多泡晚期内吞区室)———也称为多泡体(multive sicularbody,MVB)与质膜的融合,融合后其内的蛋白质和核酸等形成多个管腔内囊泡(intraluminalvesicle,ILV)进而释放到细胞外。还有一些MVB将与溶酶体融合并降解,进而通过旁分泌途径生成。从而产生一种称为外泌体(exosome)的EV亚型[3]。外泌体内包括蛋白质、脂质和RNA等多种成分,均
百花争艳意思国家自然科学基金(81870237;31570941;81700406)资助课题
△通讯作者 mincheng@wfmc.edu.cn
可发挥调控功能,但目前对外泌体miRNAs的研究最为广泛。
MiRNAs是一类长度18~25个核苷酸的非编码单链小RNA,其主要作用机制是通过碱基互补配对的方式与靶基因的3'UTR部分或完全互补,剪切靶基因的转录产物或者抑制转录产物的翻译,从而起到转录后调控靶基因表达的作用。MiRNAs在表达上具有组织和时间的特异性,是功能基因表达的重要调控分子。外泌体内miRNAs亦可调控靶细胞功能。Yu等[4]发现MSCs来源的外泌体将miR 199a传递至神经胶质瘤细胞,通过下调具有GTPase结构域、锚蛋白重复序列和PH结构域2(AGAP2)的ADP核糖基化因子GTPase激活蛋白(ArfGAP),从而抑制神经胶质瘤细胞的增殖、侵袭和迁移。Zeng等[5]验证了结肠癌细胞来源的外泌体miR 25 3p可以转移至血管内皮细胞,通过靶向KLF2和KLF4调节VEGFR2、ZO 1、Occludin和Claudin5的表达,从而促进血管通透性和血管生成;同时,外泌体miR 25 3p通过诱导血管渗漏介导在裸鼠中形成转移前的生态位,从而促进结肠癌转移。由此可见,外泌体miRNAs在生理、病理过程中发挥着重要调控功能。
二、MSCs及其外泌体
MSCs是干细胞家族的重要成员,来源于发育早期的中胚层,属多能干细胞。MSCs最初在骨髓中发现,因其具有多向分化潜能、造血支持和促进干细胞植入、免疫调控和自我复制等特点,可作为理想的种子细胞用于修复衰老和病变引起的组织器官损伤[6]。同时,MSCs是强大的免疫调节剂,通过细胞 细胞接触或分泌细胞因子调节参与同种异体反应免疫细胞的多种功能。越来越多的研究
表明,MSCs可通过释放旁分泌因子(包括TGFβ、IDO、PGE2等)来发挥其治疗作用,此外,MSCs外泌体内容物亦发挥重要的调控作用。譬如,Li等[7]发现MSCs来源的外泌体miR 133b可激活ERK1/2、STAT3和CREB等,促进轴突的再生,改善脊髓损伤后肢体运动功能。MSCs来源的外泌体miR 92a 3p通过直接靶向Wnt,以促进SOX9和聚集蛋白聚糖的表达进而增强软骨发育,减缓骨关节炎的发生并维持软骨的稳定性[8]。此外,在链脲佐菌素(STZ)诱导的糖尿病实验兔模型中注射脂肪来源的MSCs外泌体后,外泌体miR 222可调控对视网膜组织修复,对变性的视网膜有一定的治疗效果[9]。以上证据提示,MSCs源性的的外泌体在多种病理生理过程中发挥重要作用,其在调控心血管方面的功能同样值得我们关注。
三、MSCs源性外泌体miRNAs与心血管疾病
MSCs源性外泌体miRNAs在治疗心血管疾病[10],骨损伤[11],神经病学[12],癌症[13]和肾损伤[14]中发挥一定的作用。近年来,MSCs源性外泌体miRNAs在调控血管内皮细胞(endothelialcells,EC)、心肌细胞及平滑肌细胞(vascularsmoothmus clecells,VSMCs)功能,参与心血管疾病的发生以及修复心血管损伤中的作用引起学者们的极大关注。
(一)MSCs源性外泌体miRNAs通过调节EC功能参与血管损伤后修复 血管EC是血管表面的一层上皮细胞,对维持血管稳态具有至关重要的作用。MSCs来源的外泌体miRNAs通过调节血管EC的功能,如增殖、迁移和细胞间黏附等细胞间相互作用,进而影响初始的血管网络形成[15]。Liang等[16]研究发现,人脂肪细胞来源的MSCs外泌体(adMSC Exo)在体内、外均可促进EC的血管生成,而miR 125作为一种在维持血管稳态中发挥重要作用的血管生成因子,adMSC Exo及其外泌体转移的miR 125a可以通过促进内皮尖端细胞的形成来抑制DLL4的表达并调节EC的血管生成。这为MSCs源性外泌体miRNAs治疗血管生成性疾病提供了理论依据。除此以外,MSCs来源的外泌体中富含miR 21、miR 24、miR 34a、miR 126、miR 200b以及miR 210等miRNAs,这部分外泌体源miRNAs通过调控血管EC的增殖和迁移来调节血管生成[17,18]。
(二)MSCs源性外泌体miRNAs调节心肌细胞功能参与损伤后修复 MSCs来源的外泌体在不同的组织修复过程中逐渐显示出希望[19],包括减少心肌缺血 再灌注引起的损伤[20]。Luther等[21]研究表明,骨髓来源的MSCs外泌体可以通过增加受体心肌细胞中miR 21a 5p的水平,下调其下游靶基因促凋亡基因产物PDCD4、PTEN、Peli1和FasL的基因及蛋白表达,通过血管生成等的调节,进而抑制多种细胞死亡信号传导组分来减少细胞死亡以保护心脏。Wang等[22]证实人子宫内膜间充质干细胞(EnMSCs)来源的外泌体mi
R 21可以穿梭至受体心肌细胞和EC,分别调节心肌细胞和EC的凋亡和血管生成,改善了心肌梗塞(myocardialinfarction,MI)后的心脏功能;若在外泌体中抑制miR 21的表达,上述作用将会减弱,从而进一步支持了外泌体源的miR 21的调控作用。Chen等[23]研究证明,在缺氧条件下MSC分泌的外泌体中miR 133水平显着增
加,从而抑制心肌细胞的凋亡,并且可抑制Snail1在心肌细胞中的表达,继而降低炎症水平和梗死面积,从而为心脏修复和调节心脏相关疾病提供了有效的策略。Zhu等[24]研究发现在缺氧条件下骨髓间充质干细胞(BM MSCs)来源的外泌体miR 125b 5p通过下调凋亡基因p53和BAK1的表达在心肌梗塞中发挥心脏保护作用以及改善心肌细胞凋亡促进缺血性心脏修复。这为MSCs来源的外泌体miR NAs在心脏修复治疗中的临床应用提供坚实的实验依据。
(三)MSCs源性外泌体miRNAs调节VSMCs功能参与损伤后修复 VSMCs是构成血管中膜的主要细胞成分,可通过增殖、迁移及合成细胞外基质,参与高血压、动脉粥样硬化、移植血管病、血管成形术后再狭窄和血管壁损伤后的修复等多种血管疾病的病理生理过程。
VSMCs从收缩表型向成骨细胞样表型的转分化是血管钙化过程中的关键病理过程。而血管钙化是动脉粥样硬化、高血压、糖尿病血管并发症、和慢性肾脏疾病中的常见病理生理现象。大量研究报道,miRNAs可调节与血管钙化相关的信号通路。因此,外泌体中的miRNAs很可能会影响
与血管钙化相关的重要途径。Guo等[25]研究证明BMSCs来源的外泌体降低了高磷诱导的人主动脉平滑肌细胞(HA VSMCs)中钙的沉积和细胞内钙的含量。在高磷处理的HA VSMCs中加入外泌体后,63个miR NAs显著增加,并且构成了功能性miRNAs mRNA网络。该网络中的基因在与血管钙化有关的途径中均显著富集,提示MSCs来源的外泌体可以通过修饰miRNAs来改善高磷诱导的HA VSMCs钙化,进而降低血管损伤。此外,Wang等[26]研究发现糖基化终产物(AGEs BSA)可加速VSMCs中的钙沉积并增加反应活性氧(ROS)的产生。然而AGEs BSA预处理的MSCs来源的外泌体含高表达的miR 146a,可通过下调Runx2和BMP 2的基因和蛋白的表达来抑制VSMCs的钙沉积,并且还可以通过硫氧还蛋白互作蛋白(TXNIP)/ROS信号通路抑制高糖诱导的VSMCs钙化。因此,MSCs来源的外泌体miR 146a可能是血管钙化的潜在治疗靶标。
在临床中,内膜增生、血管壁增厚是对血管损伤的响应,VSMCs的增殖和迁移以及细胞外基质的沉积是其中的主要发生原因。Wang等[27]揭示MSCs来源的外泌体miR 125b可靶向抑制Myo1e的表达,抑制VSMCs增殖和迁移能力,从而抑制血管成形术后大鼠颈动脉内膜的增生,提示外泌体miR 125b可能是治疗血管疾病和动脉损伤的潜在靶点。
四、展望
心血管细胞损伤是心血管疾病、糖尿病以及肿瘤中常见的病理生理现象,目前临床缺乏有效的治疗手段。随着MSCs源性外泌体研究的逐步深入,其在治疗心血管细胞损伤修复中的作用已得到众多研究者的认可。多项研究表明MSCs源性外泌体通过调控EC、心肌细胞和VSMCs的功能,在肾损伤、心脏损伤、脑损伤等中发挥类似于MSCs促组织修复及再生的作用。特别是MSCs源性外泌体miR NAs可通过调节其上下游的靶基因参与调控EC、心肌细胞和VSMCs,进而促进血管再生,支持造血功能,修复受损肾脏,促进心肌修复,改善心脏重塑等。相信随着研究手段和技术的发展,MSCs的临床应用水平会逐步提高,MSCs源性外泌体miRNAs及其它内容物在调控EC、心肌细胞和VSMCs功能中的作用及机制会不断完善,这将为临床防治相关心血管损伤性疾病提供了新的靶点和理论依据,也为临床应用外泌体防治肿瘤、糖尿病等提供了新的策略。
参考文献厌食
1 马铭辰,刘尧.间充质干细胞外泌体对组织再生的作用及其机制的研究进展.中国医科大学学报,2020,49 161~164.
2 杨金鑫,王海军,赵永坤,等.外泌体的功能及其在临床应用中的研究进展.中国畜牧兽医,2018,45 3608~3613.3 FujitaY,KosakaN,ArayaJ,etal.Extracellularvesiclesinlungmicroenvironmen
tandpathogenesis.TrendsMolMed,2015,21 533~542.
4 YuL,GuiS,LiuY,etal.ExosomesderivedfrommicroR NA 199a overexpressingmesenchymalstemcellsinhibitglio maprogressionbydown regulatingAGAP2.Aging(AlbanyNY),2019,11 5300~5318.
5 ZengZ,LiY,PanY,etal.Cancer derivedexosomalmiR 25 3ppromotespre metastaticnicheformationbyinducingvascularpermeabilityandangiogenesis.NatCommun,2018,9 5395.
6 沈甜甜,方翼.间充质干细胞的研究进展.中国临床药理学杂志,2019,35 2939~2942.
7 LiD,ZhangP,YaoX,etal.ExosomesderivedfrommiR 133b modifiedmesenchymalstemcellspromoterecoveryaf terspinalcordinjury.FrontNeurosci,201
8,12 845.
8 MaoG,ZhangZ,HuS,etal.ExosomesderivedfrommiR 92a 3p overexpressinghumanmesenchymalstemcellsen
hancechondrogenesisandsuppresscartilagedegradationviatargetingWNT5A.StemCellResTher,2018,9 247.
9 SafwatA,SabryD,RagiaeA,etal.Adiposemesenchymalstemcells derivedexosomesattenuateretinadegenerationofstreptozotocin induceddiabetesinrabbits.JCircBiomark,2018,7 144852274.
农村医保报销范围10 XingX,LiZ,YangX,etal.Adipose derivedmesenchy malstemcells derivedexosome mediatedmicroRNA 342 5pprotectsendothelialcellsagainstatherosclerosis.Aging,2020,12 3880~3898.
11 SunH,HuS,ZhangZ,etal.Expressionofexosomalmi croRNAsduringchondrogenicdifferentiationofhumanbonemesenchymalstemcells.JCellBiochem,2019,120 171~181.
12 UmezuT,OhyashikiK,KurodaM,etal.LeukemiacelltoendothelialcellcommunicationviaexosomalmiRNAs.On cogene,2013,32 2747~2755.
13 YangH,ZhangH,GeS,etal.Exosome derivedmiR 130aactivatesangiogenesisingastriccancerbytargetingC MYBinvascularendothelialcells.MolTher,2018,26
2466~2475.牛肉炒饼
14 VinasJL,BurgerD,ZimpelmannJ,etal.Transferofmi croRNA 486 5pfromhumanendothelialcolonyformingcell derivedexosomesreducesischemickidne
yinjury.Kid neyInt,2016,90 1238~1250.
15 葛丽特,寻成峰,卓毅,等.人嗅觉黏膜间充质干细胞来源的外泌体促进内皮细胞的血管生成.中国生物化学
与分子生物学报,2020,36 103~109.
16 LiangX,ZhangL,WangS,etal.Exosomessecretedbymesenchymalstemcellspromoteendothelialcellangiogene sisbytransferringmiR 125a. JCellSci,2016,129
2182~2189.
17 DaSilvaMeirellesL,FontesAM,CovasDT,etal.Mech anismsinvolvedinthetherapeuticpropertiesofmesenchy malstemcells. CytokineGrowthFactorRev,2009,20
跆拳道竞技419~427.
18 KomakiM,NumataY,MoriokaC,etal.Exosomesofhu
manplacenta derivedmesenchymalstemcellsstimulatean giogenesis.StemCellResTher,2017,8 219.
19 ZhangK,ZhaoX,ChenX,etal.Enhancedtherapeuticeffectsofmesenchymalstemcell derivedexosomeswithaninjectablehydrogelforhindlimbischemiatreatment.CSAp plMaterInterfaces,2018,10 30081~30091.
20 LaiRC,ArslanF,LeeMM,etal.ExosomesecretedbyMSCreducesmyocardialischemia/reperfusioninjury.StemCellRes,2010,4 214~222.
21 LutherKM,HaarL,McguinnessM,etal.ExosomalmiR 21a 5pmediatescardioprotectionbymesenchymalstemcells.JMolCellCardiol,2018,119 125~137.
22 WangK,JiangZ,WebsterKA,etal.Enhancedcardio protectionbyhumanendometriummesenchymalstemcellsdrivenbyexosomalmicroRNA 21.StemCellsTranslMed,2017,6 209~222.
23 ChenY,ZhaoY,ChenW,etal.MicroRNA 133overex pressionpromotesthetherapeuticefficacyofmesenchymalstemcellsonacutemyocardialinfarction.StemCellResT her,2017,8 268.
24 ZhuL,TianT,WangJ,etal.Hypoxia elicitedmesenchy malstemcell derivedexosomesfacilitatescardiacrepairthroughmiR 125b mediatedpreventionofcelldeathinmy ocardialinfarction.Theranostics,2018,8 6163~6177.
思维决定一切
25 GuoY,BaoS,GuoW,etal.Bonemarrowmesenchymalstemcell derivedexosomesalleviatehighphosphor
us in ducedvascularsmoothmusclecellscalcificationbymodif yingmicroRNAprofiles.FunctIntegrGenomics,2019,19
633~643.
26 WangB,WangX,HouD,etal.Exosomesderivedfromacutemyeloidleukemiacellspromotechemoresistancebyenhancingglycolysis mediatedvascularremodeling.JCellPhysiol,2018,234 10602~10614.
27 WangD,GaoB,YueJ,etal.ExosomesfrommesenchymalstemcellsexpressingmiR 125binhibitneointimalhyperpla siaviamyosinIE. JCellMolMed,2019,23 1528~1540.