1. 液氮法
目前,细胞冻存最常用的技术是液氮冷冻保存法,主要采用加适量保护剂的缓慢冷冻法冻存
细胞。细胞冷冻技术的关键是尽可能地减少细胞内水分,减少细胞内冰晶的形成。采用甘油
或二甲基亚砜作保护剂,这两种物质分子量小,溶解度大,易穿透细胞,可以使冰点下降,
提高细胞膜对水的通透性,且对细胞无明显毒性。慢速冷冻方法又可使细胞内的水分渗出细
胞外,减少胞内形成冰结晶的机会,从而减少冰晶对细胞的损伤。
常用的细胞冷冻贮存器为液氮贮存器。
细胞冻存时常备的材料有:0.25%胰蛋白酶,含10%~20%的血清培养液,DMSO(分析纯)
或无色新鲜甘油(121C蒸气高压消毒),2mL安瓿(或专用细胞冻存管)、吸管、离心管、
喷灯、纱布袋(或冻存管架)等。
主要操作步骤为:
(1)选择处于对数生长期的细胞,在冻存前一天最好换液。将多个培养瓶中的细胞培养液
去掉,用0.25% 胰蛋白酶消化。适时去掉胰蛋白酶,加入少量新培养液。用吸管吸取培养
液反复吹打瓶壁上的细胞,使其成为均匀分散的细胞悬液。悬浮生产细胞则不要消化处理。
然后将细胞收集于离心管中离心(1000r/min,10分钟)。
(2)去上清液,加入含20%小牛血清的完全培养基,于4℃预冷15分钟后,逐滴加入已无
菌的DMSO或甘油,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,细胞浓度为3106~1107/mL之间。
(3)将上述细胞分装于安瓿或专用冷冻塑料管中,安瓿装1~1.5mL在火焰喷灯上封口,
封口处要完全封闭,圆滑无勾。冷冻管要将盖子盖紧,并标记好细胞名称和冻存日期,同时
作好登记(日期、细胞种类及代次、冻存支数)。
(4)将装好细胞的安瓿或冻存管装入沙布袋内;置于液氮流行英文歌曲 容器颈口处存放过夜,次日转入
液氮中。采用控制降温速度的方法也可采用下列步骤:先将安瓿置入4℃冰箱中2~3小时,
再移至冰箱冷冻室内3~4小时(此步可省略),再吊入液氮容器颈气态部分存放2小时,最
后沉入液氮中。
2. 分布降温法(深低温冰箱法)
细胞系冻存程序:
1) 单层细胞的消化。将经24~48小时培养关于海的古诗 已长成单层的传代细胞培养物弃去生长液,加适
量ATV,1~2分钟后倒弃ATV,再加入少量ATV液,经0.5~1分钟倒去ATV,室温或37oC
温箱作用2~3分钟,视细胞解离情况,拍打细胞培养瓶。使单层细胞完全解离。SP2/0瘤
细胞,待生长好后用吸管吹打,再经1 000转/ 分离心lO分钟。
2) 离心洗涤:向培养瓶内加5~1 0m1预冷的MEM使细胞悬浮,再将其吸出置灭菌离心管
中,以1 000rpm 离心8~10分钟后弃去上清液。
3) 细胞悬液的制备:向离心管内逐滴缓慢加入预冷的冻存保护液,使细胞浓车兵 度为150~400
万/ml,然后迅速分装于安瓿瓶中,每瓶加量为lml。
4震撼的英文 ) 致冷冻结:将安瓿瓶放入带有棉垫的纸盒或塑料盒内,直立置不同条件下致冷冻结果保
存:
a、4oC两小时后移至一2OoC作用2小时,再移入一4OoC4小时后在一7OoC下24小时投
入液氮。
b, 一20oC4小时后移致一4OoC。C经4小时移人一7OoC冰箱24小时,投入液氮。
c, 一4OoC4小时后移入一70oC24小时后投入液氮。
d、一20oC4小时后移入一70oC经24小时后投入液氮中。
e、一70oC24小时后投入液氮中。
5) 液氮中保存:将冻结后的安瓿装入预冷的小布袋中,投入液氮。为防止安瓿漂浮,可预
先在小布袋中加入几块小卵石。
3. 玻璃化法
玻璃化保存(Vitrification)是一种超速冷冻方法。它是以极快的速度冷冻细胞,使细胞内外的
游离水迅速形成玻璃样物质,而不形成冰晶。这种保存方法既避免了由于慢速降温时导致的
盐浓度升高,又防止了由于冰晶形成造成的物理损伤,可获得较高存活率。
玻璃星座的性格 化首先由Luyet在1937年提出,他认为生命是生物活体系统的原子或其他结构元的一
种特殊排列.并且轻微的排列位置扰动就会破坏平衡从而导致死亡,而结冰时的驱动力会破
坏这种特殊的排列,这就是冰冻死亡的原因。玻璃
化比冻结固化方法引起的结构变化要小,因而是一种较理想的低温保存途径。
1981年,Fahy首先明确提出,用高浓度的低温保护剂溶液,可在较慢地冷却速率以及高压
条件下实现完全的玻璃化,以后又发展了一些所谓“玻璃化溶液”,使细胞、组织乃至器官
等范围广泛的生物系统玻璃化低温保存成为可能。
1985年,Rail和Fahy[ 目用这种玻璃化溶液使鼠胚胎玻璃化保存获得成功,是这种技术走
向实用化的首次突破。
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