本文作者:kaifamei

一种菌酶酸复合制剂及其应用的制作方法

更新时间:2024-12-22 22:57:44 0条评论

一种菌酶酸复合制剂及其应用的制作方法



1.本发明属于饲料添加剂技术领域,具体涉及一种菌酶酸复合制剂及其应用。


背景技术:

2.饲料原料常见的霉菌毒素来源有:曲霉菌属(aspergillus,主要分泌黄曲霉毒素等)、青霉菌属(penicillium,主要分泌赭曲霉毒素、桔霉素等)、镰刀菌属(fusarium,主要分泌呕吐毒素、玉米赤霉烯酮、t-2毒素等)和镰刀菌、赭曲霉、桔青霉属(主要分泌麦角毒素)等。霉菌的大量繁殖会引起饲料发生霉变,这不仅会使饲料的适口性降低,而且还会影响畜禽的采食量,同时由于霉菌的生长和繁殖是通过饲料中的营养成分来供给,因此霉变还会降低饲料的营养价值。另外,霉菌在代谢过程中产生霉菌毒素,而霉菌毒素在畜禽采食后不仅会影响畜禽的免疫机能,高剂量的霉菌毒素还会导致畜禽发生中毒现象。据统计,有66%以上的饲料原料至少存在1种霉菌毒素污染,35%的饲料原料存在2种以上霉菌毒素污染,而玉米粕、豆粕及麸皮等霉菌毒素的含量是整粒谷物含量的30~500倍,几乎所有的花生粕都存在霉菌毒素污染,饲料霉变严重危害饲料业及畜牧业。
3.为此,急需开发能够抑制饲料原料中有害霉菌的绿产品,以提高饲料产品的安全性,减少公共危害。


技术实现要素:

4.本发明的目的是提供一种能够抑制多种霉菌生长繁殖的饲料添加剂。
5.为此,本发明提供了一种菌酶酸复合制剂,包括:3-4份葡萄糖氧化酶、3-4份凝结芽孢杆菌、1-2份乳酸制剂和0-2份载体。
6.具体的,上述葡萄糖氧化酶的酶活为8000u/g。
7.具体的,上述凝结芽孢杆菌的菌活为1.0
×
10
10
cfu/ml。
8.具体的,上述乳酸制剂中乳酸质量浓度为25%。
9.本发明还提供了一种抑制饲料中镰刀菌、赭曲霉、桔青霉生长繁殖的方法,包括以下步骤:将上述菌酶酸复合制剂加入到生理盐水中,摇床提取后离心取上清液,得到菌酶酸复合制剂溶液,将所述菌酶酸复合制剂溶液加入到饲料中混匀。
10.具体的,以饲料质量计,所述菌酶酸复合剂溶液的添加量为0.48%-1.6%。
11.与现有技术相比,本发明具有以下优点和有益效果:
12.本发明提供的这种菌酶酸复合制剂可显著抑制镰刀菌、赭曲霉、桔青霉的生长繁殖,将其作为添加剂加入饲料中,能够从源头抑制镰刀菌、赭曲霉、桔青霉,有效去除饲料中相应酶菌毒素的累积,可提高饲料产品的安全性,减少公共危害。
13.以下将结合附图对本发明做进一步详细说明。
附图说明
14.图1是本发明实施例3中不同试验组桔青霉生长情况;a、试验组1;b、试验组2、c、试
验组3;d、试验组4;e、试验组5;f、试验组6;g、阳性对照;h、阴性对照。
15.图2是本发明实施例3中不同对照组桔青霉生长情况;a、对照组1;b、对照组2、c、对照组3。
16.图3是本发明实施例3中不同试验组赭曲霉生长情况;a、试验组1;b、试验组2、c、试验组3;d、试验组4;e、试验组5;f、试验组6;g、阳性对照;h、阴性对照。
17.图4是本发明实施例3中不同对照组赭曲霉生长情况;a、对照组1;b、对照组2、c、对照组3。
18.图5是本发明实施例3中不同试验组镰刀菌生长情况;a、试验组1;b、试验组2、c、试验组3;d、试验组4;e、试验组5;f、试验组6;g、阳性对照;h、阴性对照。
19.图6是本发明实施例中3不同对照组镰刀菌生长情况;a、对照组1;b、对照组2、c、对照组3。
具体实施方式
20.下面将结合实施例对本发明中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。尽管已经详细描述了本发明的代表性实施例,但是本发明所属技术领域的普通技术人员将理解,在不脱离本发明范围的情况下可以对本发明进行各种修改和改变。因此,本发明的范围不应局限于实施方案,而应由所附权利要求及其等同物来限定。
21.下面通过具体实施例对本发明的菌酶酸复合制剂的效果进行研究,本发明实施例中使用的乳酸制剂中乳酸质量浓度为25%。
22.实施例1:
23.本实施例提供了一种菌酶酸复合制剂,包括:3份葡萄糖氧化酶、4份凝结芽孢杆菌、2份乳酸制剂和2份淀粉。
24.其中葡萄糖氧化酶的酶活为8000u/g,凝结芽孢杆菌的菌活为1.0
×
1010cfu/ml。
25.实施例2:
26.本实施例提供了一种菌酶酸复合制剂,包括:4份葡萄糖氧化酶、3份凝结芽孢杆菌、1份乳酸和1份淀粉。
27.其中葡萄糖氧化酶的酶活为8000u/g,凝结芽孢杆菌的菌活为1.0
×
1010cfu/ml。
28.实施例3:
29.本实施例研究了酶酸复合制剂对镰刀菌、赭曲霉、桔青霉的抑制作用,具体步骤如下。
30.1、配制培养基
31.pda培养基:马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂20g,蒸馏水补足至1000ml。液体培养基不添加琼脂。
32.察氏培养基::硝酸钠3g,磷酸氢二钾1g,硫酸镁(mgso4·
7h2o)0.5g,氯化钾0.5g,硫酸亚铁0.01g,蔗糖30g,琼脂15~20g,蒸馏水补足至1000ml。液体培养基不添加琼脂。
33.ypd培养基:1%酵母膏,2%蛋白胨,2%葡萄糖,2%琼脂粉。液体培养基不添加琼脂。
34.2、实验试剂配制
35.制备菌酶酸复合制剂溶液:称取1g实施例1提供的酶酸复合制剂,加入99ml灭菌的生理盐水,于摇床提取30min,离心取上清,再用灭菌生理盐水稀释至不同浓度,备用。
36.制备镰刀菌悬液:将镰刀菌接种于50ml pda液体培养基中,置于28℃培养72h左右,观察菌悬液浑浊度,选择对数期菌液作为试验菌悬液备用。
37.制备赭曲霉菌悬液:将赭曲霉接种于50ml察氏液体培养基中,置于28℃培养72h左右,观察菌悬液浑浊度,选择对数期菌液作为试验菌悬液备用。
38.制备桔青霉菌悬液:将桔青霉接种到ypd斜面,置于28℃培养72h左右,用无菌生理盐水从斜面洗脱菌液,作为备用菌悬液。
39.制备葡萄糖氧化酶溶液:称取1g酶活为8000u/g的葡萄糖氧化酶,加入99ml灭菌的生理盐水,于摇床提取30min,离心取上清,再用灭菌生理盐水稀释至不同浓度,备用。
40.制备凝结芽孢杆菌溶液:称取1g菌活为1.0
×
1010cfu/ml的凝结芽孢杆菌,加入99ml灭菌的生理盐水,于摇床提取30min,离心取上清,再用灭菌生理盐水稀释至不同浓度,备用。
41.制备乳酸溶液:称取1g乳酸,加入99ml灭菌的生理盐水,于摇床提取30min,离心取上清,再用灭菌生理盐水稀释至不同浓度,备用。
42.3、平板混菌实验
43.(1)桔青霉组
44.取11个pda平板培养基,分别作为阴性对照组、阳性对照组、试验组1-6和对照组1-3,每个平板中菌酶酸复合制剂溶液和桔青霉菌悬液的添加量如下,其中菌酶酸复合制剂的浓度为相对于平板中培养基的体积浓度。
45.阳性对照:加入1ml的桔青霉菌悬液;
46.阴性对照:加入1ml经煮沸5分钟灭活的桔青霉菌悬液;
47.试验组1:加入1ml的桔青霉菌悬液和0.08%的菌酶酸复合制剂溶液;
48.试验组2:加入1ml的桔青霉菌悬液和0.16%的菌酶酸复合制剂溶液;
49.试验组3:加入1ml的桔青霉菌悬液和0.32%的菌酶酸复合制剂溶液;
50.试验组4:加入1ml的桔青霉菌悬液和0.48%的菌酶酸复合制剂溶液;
51.试验组5:加入1ml的桔青霉菌悬液和0.64%的菌酶酸复合制剂溶液;
52.试验组6:加入1ml的桔青霉菌悬液和1.6%的菌酶酸复合制剂溶液;
53.对照组1:加入1ml的桔青霉菌悬液和1.6%的葡萄糖氧化酶溶液;
54.对照组2:加入1ml的桔青霉菌悬液和1.6%的凝结芽孢杆菌溶液;
55.对照组3:加入1ml的桔青霉菌悬液和1.6%的乳酸溶液。
56.将各组均置于28℃摇床培养72h,观察桔青霉的生长情况,结果如图1-2所示。6个试验组桔青霉平板上均未正常生长,但加入到平板中的菌丝周边有气泡,可能菌体未被杀死或完全抑制,仍有活力,但生长十分缓慢,已无法繁殖。阳性对照组和对照组1-4中桔青霉生长旺盛。
57.检测各试验组和对照组对桔青霉cgmcc 3.10140抑菌率,结果如表1所示。
58.表1桔青霉抑菌率检测结果
[0059] 抑菌率试验组190%
试验组292%试验组397%试验组499%试验组5100%试验组6100%对照组130%对照组215%对照组310%
[0060]
(2)赭曲霉组
[0061]
取11个察氏平板培养基,分别作为阴性对照组、阳性对照组、试验组1-6和对照组1-3,每个平板中菌酶酸复合制剂溶液和赭曲霉菌悬液的添加量如下,其中菌酶酸复合制剂的浓度为相对于平板中培养基的体积浓度。
[0062]
阳性对照:加入1ml的赭曲霉菌悬液;
[0063]
阴性对照:加入1ml经煮沸5分钟灭活的赭曲霉菌悬液;
[0064]
试验组1:加入1ml的赭曲霉菌悬液和0.08%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0065]
试验组2:加入1ml的赭曲霉菌悬液和0.16%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0066]
试验组3:加入1ml的赭曲霉菌悬液和0.32%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0067]
试验组4:加入1ml的赭曲霉菌悬液和0.48%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0068]
试验组5:加入1ml的赭曲霉菌悬液和0.64%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0069]
试验组6:加入1ml的赭曲霉菌悬液和1.6%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0070]
对照组1:加入1ml的赭曲霉菌悬液和1.6%的葡萄糖氧化酶溶液;
[0071]
对照组2:加入1ml的赭曲霉菌悬液和1.6%的凝结芽孢杆菌溶液;
[0072]
对照组3:加入1ml的赭曲霉菌悬液和1.6%的乳酸溶液。
[0073]
将各组均置于28℃摇床培养72h,观察赭曲霉的生长情况,结果如图3-4所示。6个试验组平板上均未见赭曲霉生长,跟阴性对照一致,说明菌酶酸产品对赭曲霉抑制效果明显。阳性对照组和对照组1-4中赭曲霉生长旺盛。
[0074]
检测各试验组和对照组对赭曲霉cgmcc 3.6255抑菌率,结果如表2所示。
[0075]
表2赭曲霉抑菌率检测结果
[0076]
[0077][0078]
(3)镰刀菌组
[0079]
取11个ypd平板培养基,分别作为阴性对照组、阳性对照组、试验组1-6和对照组1-3,每个平板中菌酶酸复合制剂溶液和镰刀菌菌悬液的添加量如下,其中菌酶酸复合制剂的浓度为相对于平板中培养基的体积浓度。
[0080]
阳性对照:加入1ml的镰刀菌菌悬液;
[0081]
阴性对照:加入1ml经煮沸5分钟灭活的镰刀菌菌悬液;
[0082]
试验组1:加入1ml的镰刀菌菌悬液和0.08%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0083]
试验组2:加入1ml的镰刀菌菌悬液和0.16%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0084]
试验组3:加入1ml的镰刀菌菌悬液和0.32%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0085]
试验组4:加入1ml的镰刀菌菌悬液和0.48%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0086]
试验组5:加入1ml的镰刀菌菌悬液和0.64%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0087]
试验组6:加入1ml的镰刀菌菌悬液和1.6%的菌酶酸复合制剂溶液;
[0088]
对照组1:加入1ml的镰刀菌菌悬液和1.6%的葡萄糖氧化酶溶液;
[0089]
对照组2:加入1ml的镰刀菌菌悬液和1.6%的凝结芽孢杆菌溶液;
[0090]
对照组3:加入1ml的镰刀菌菌悬液和1.6%的乳酸溶液。
[0091]
将各组均置于28℃摇床培养72h,观察镰刀菌的生长情况,结果如图5-6所示。添加量在0.08%-0.32%的试验组1-3镰刀菌抑制率在50%以上,添加量0.48%-1.6%的试验组4-6能完全抑制镰刀菌。阳性对照组和对照组1-4中桔青霉生长旺盛。检测各试验组和对照组对镰刀菌cgmcc 3.4610抑菌率,结果如表3所示。
[0092]
表3镰刀菌抑菌率检测结果
[0093]
[0094][0095]
综上所述,添加量不低于0.48%时,菌酶酸复合制剂对镰刀菌、赭曲霉、桔青霉的生长抑制效果显著。
[0096]
以上例举仅仅是对本发明的举例说明,并不构成对本发明的保护范围的限制,凡是与本发明相同或相似的设计均属于本发明的保护范围之内。


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