天根

高纯度质粒小提中量试剂盒说

明书-天根(总2页)

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1.柱平衡步骤：向吸附柱CP4中（吸附柱放入收集管中）加入500μL的平

衡液BL,12000rpm（~13400g）离心1min，倒掉收集管中的废液，将吸

附柱重新放回收集管中。（请使用当天处理过的柱子）

2.取5-15ml过夜培养的菌液加入离心管中，12000rpm(~13400g）离心1

min，尽量吸除上清。

3.注意：菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中，菌

体量以能够充分裂解为佳，过多的菌体裂解不充分会降低质粒的提取效

率。

4.向留有菌体沉淀的离心管中加入500μL溶液Pl（请先检查是否已加入

RNaA)，使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。

5.注意：请务必彻底悬浮细菌沉淀，如果有未彻底混匀的菌块会影响裂解，

导致提取量和纯度偏低。质粒

6.向离心管中加入500μL溶液P2，温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂

解。注意：温和地混合不要剧烈震荡，以免污染基因组DNA。此时菌液应

变得清亮粘稠，所用时间不应超过5min，以免质粒受到破坏。如果未变得

清亮，可能由于菌体过多，裂解不彻底，应减少菌体量。

7.向离心管中加入700μL溶液P3，立即温和地上下翻转6-8次，充分混

匀，此时会出现白色絮状沉淀。12000rpm(~13400g）离心10min，此时

在离心管底部形成沉淀。

8.注意：P3加入后应立即混合，避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白

色沉淀，可再次离心后取上清。

9.将上一步收集的上清液分次加入过滤柱Cs（过滤柱放入收集管中）,

12000rpm（~13400g）离心2min，小心地将离心后收集管中得到的溶液分

次加入吸附柱CP4中（吸附柱放入收集管中）,（如果过滤柱中有残余的

液体说明步骤5吸取的上清中杂质过多，可以延长离心的时间；如果离心

后收集管底部有少量的沉淀．尽量地吸取上清）。

10.12000rpm(~13400g）离心lmin，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP4放

入收集管中。

11.向吸附柱CP4中加入500μL去蛋白液PD，12000rpm（~13400g）离心l

min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP4放入收集管中。

12.向吸附柱CP4中加入600μL漂洗液PW（请先检查是否已加入无水乙

醇），12000rpm（~13400g）离心1min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱

CP4放入收集管中。注意：加入漂洗液PW后，如果室温静置2-5min，有

助于更好地去除杂质。

13.向吸附柱CP4中加入600μL漂洗液PW,12000rpm（13400g）离心l

min，倒掉收集管中的废液。

14.将吸附柱CP4重新放回收集管中置于12000rpm（~13400g）离心2min，

目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。

15.注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。

为确保下游实验不受残留乙醇的影响，建议将吸附柱CP4开盖，置于室温

放置数min，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。

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16.将吸附柱自科置于一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加

100-300μL洗脱缓冲液TB，室温放置2min，12000rpm（~13400g）离心

lmin将质粒溶液收集到离心管中。

17.注意：为了增加质粒的回收效率，可将得到的溶液重新加入离心吸附柱

中．重复步骤12。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用水做洗

脱液，应保证其pH值在7.0-8.5范围内（可以用NaOH将水的pH值调到

此范围）,pH值低于7.0会降低洗脱效率。洗脱缓冲液体积不应少于

100μL，体积过小影响回收效率。且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA

降解。

质粒DNA浓度及纯度检测:

得到的质粒DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。

电泳可能为单一条带，也可能为2到3条DNA条带，这主要与提取物培养时间

长短、提取时操作剧烈程度等有关。OD260值为l相当于大约50μg/ml双

链DNA。OD260/0D28。比值应为1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲

液，而使用去离子水，比值会偏低，但并不表示纯度低，因为pH值和离子存

在会影响光吸收值。